Хинолятфосфорибозил-трансфераза (хфртаза) растения табака, кодирующая указанный фермент днк и способы их применения, в том числе для получения трансгенных растений

1 Исследования, спонсированные Федеральными органами Данное изобретение осуществлено при поддержке государства через Национальный Фонд по научным исследованиямМСВ 9206506. Государство имеет определенные права на данное изобретение. Область техники, к которой относится изобретение Данное изобретение относится к растительной хинолятфосфорибозил-трансферазе(ХФРТазе) и к ДНК, кодирующей этот фермент. В частности, данное изобретение относится к применению ДНК, кодирующей хинолятфосфорибозил-трансферазу, для получения трансгенных растений с генетически измененным содержанием никотина, и к растениям, полученным таким образом. Предпосылки создания изобретения Производство табака с пониженным содержанием никотина представляет интерес,учитывая способность никотина вызывать зависимость. Кроме того, растения табака с исключительно низким уровнем продуцирования никотина или не продуцирующие никотин привлекательны как реципиенты для трансгенов,экспрессирующих коммерчески ценные продукты, такие как фармацевтические средства, компоненты косметических средств или пищевые добавки. Разработаны различные способы удаления никотина из табака. Однако большинство этих способов удаляет другие ингредиенты из табака помимо никотина, что вредно влияет на табак. Классические методы выращивания культурных растений дают растения табака с более низким содержанием никотина (приблизительно 8%), чем содержание, обнаруженное в растениях табака дикого типа. Желательно получение растений табака и табак с еще меньшим содержанием никотина. Одним из подходов к снижению содержания биологического продукта состоит в необходимости уменьшения количества необходимого фермента в биохимическом каскаде, ведущего к образованию этого продукта. Когда предпочтительный фермент находится в природе в количестве, ограничивающем скорость (относительно других ферментов, необходимых в каскаде реакций), любое снижение представленности фермента будет уменьшать продуцирование конечного продукта. Если количество фермента в естественном состоянии не является ограничивающим скорость, его присутствие в клетке необходимо уменьшить до ограничивающего скорость содержания, чтобы снизить выход каскада реакций. Напротив, если в естественном состоянии количество фермента является ограничивающим скорость, тогда любое возрастание активности фермента приведет к возрастанию выхода конечного продукта биосинтетического каскада реакций. 2 Никотин первоначально образуется в корнях растения табака и затем переносится в листья, где он накапливается (Tso, Physiology andBiochemistry of Tobacco Plants, pp. 233-34, Dowden, HutchinsonRoss, Stroudsburg, Pa. (1972. Обязательной стадией при биосинтезе никотина является образование никотиновой кислоты из хинолиновой кислоты, которое катализируется ферментом хинолинфосфорибозил-трансферазой ("ХФРТазой"). Оказывается, что ХФРТаза является ограничивающим скорость ферментом в каскаде реакций, поставляющем никотиновую кислоту для синтеза никотина в табаке. См., например, Feth et al., "Regulation inPlant., 68, pp. 667-72 (1986). Изменение содержания никотина в растениях табака путем антисмысловой регуляции экспрессии путресценсметилтрансферазы (ПМТазы) описывается в патентах США 5369023 и 5260205, Nakatani andMalik. В международной заявке РСТ WO 94/28142, Wahad and Malik, описывается ДНК,кодирующая ПМТ, и применение смысловой и антисмысловой содержащих ПМТ конструкций. Краткое изложение сущности изобретения Первым аспектом настоящего изобретения является выделенная молекула ДНК, содержащая ПОСЛЕД.1; последовательности ДНК,кодирующие фермент с ПОСЛЕД.2; последовательности ДНК, гибридизирующие с такой ДНК и кодирующие фермент хинолятфосфорибозил-трансферазу; и последовательности ДНК,отличающиеся от указанной выше ДНК вследствие вырождения генетического кода. Пептид,кодированный такой ДНК, составляет другой аспект изобретения. Другим аспектом настоящего изобретения является ДНК-конструкция, содержащая промотор, функционирующий в растительной клетке,и сегмент ДНК, кодирующий фермент хинолятфосфорибозил-трансферазу, расположенный в прямом направлении от промотора и функционально связанный с ним. ДНК, кодирующая фермент, может находиться в антисмысловом или смысловом направлении. Другим аспектом настоящего изобретения является способ получения трансгенной растительной клетки с пониженной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы(ХФРТазы) путем предоставления растительной клетки типа, известного как экспрессирующего хинолятфосфорибозил-трансферазу; трансформации растительной клетки экзогенной ДНКконструкцией, содержащей промотор и ДНК,содержащую часть последовательности, кодирующей мРНК хинолятфосфорибозилтрансферазы. Другим аспектом настоящего изобретения является трансгенное растение вида Nicotiana с 3 пониженной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) относительно нетрансформированного контрольного растения. Клетки таких растений содержат ДНКконструкцию, включающую сегмент последовательности ДНК, которая кодирует мРНК растительной хинолятфосфорибозил-трансферазы. Другим аспектом настоящего изобретения является способ снижения экспрессии гена хинолятфосфорибозил-трансферазы в растительной клетке путем выращивания растительной клетки, трансформированной с целью включения экзогенной ДНК, где транскрибирующая цепь экзогенной ДНК комплементарна к мРНК хинолятфосфорибозил-трансферазы, эндогенной для клетки. Транскрипция комплементарной цепи снижает экспрессию эндогенного хинолятфосфорибозил-гена. Другим аспектом настоящего изобретения является способ получения растения табака с пониженным содержанием никотина в листьях растения табака путем выращивания растения табака, клетки которого содержат последовательность экзогенной ДНК, где транскрибирующая цепь экзогенной ДНК комплементарна к эндогенной матричной РНК хинолятфосфорибозил-трансферазы в клетках. Другим аспектом настоящего изобретения является способ получения трансгенной растительной клетки с повышенной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы(ХФРТазы) путем трансформации растительной клетки,известной как экспрессирующая хинолятфосфорибозил-трансферазу,экзогенной ДНКконструкцией, содержащей последовательность ДНК, кодирующую хинолятфосфорибозилтрансферазу. Другим аспектом настоящего изобретения является трансгенное растение Nicotiana с повышенной экспрессией хинолятфосфорибозилтрансферазы (ХФРТазы), где клетки трансгенного растения содержат последовательность экзогенной ДНК, кодирующую растительную хинолятфосфорибозил-трансферазу. Другим аспектом настоящего изобретения является способ повышения экспрессии гена хинолятфосфорибозил-трансферазы в растительной клетке путем выращивания растительной клетки, трансформированной с целью включения экзогенной ДНК, кодирующей хинолятфосфорибозил-трансферазу. Другим аспектом настоящего изобретения является способ получения растения табака с повышенным содержанием никотина в листьях путем выращивания растения табака, клетки которого содержат последовательность экзогенной ДНК, которая кодирует хинолятфосфорибозил-трансферазу, функциональную в клетках. Краткое описание чертежей Фиг. 1 показывает каскад биосинтетических реакций при образовании никотина. Ферментативные активности, известные как регули 004652 4 руемые Nic1 и Nic2, представляют активность ХФРТазы (хинолятфосфорибозил-трансферазы) и ПМТазы (путресценс-метилтрансферазы). На фиг. 2 А приводится нуклеотидная последовательность кДНК NtQPTI (ПОСЛЕД.1) с кодирующей последовательностью (ПОСЛЕД.3), показанной заглавными буквами. На фиг. 2 Б приводится образованная аминокислотная последовательность (ПОСЛЕД.2) ХФРТазы табака, кодированной кДНКNtQPTI. На фиг. 3 приводятся разложенные в ряд образованная аминокислотная последовательность NtQPTI и родственные последовательности Rhodospirillum rubrum, Mycobacterium lepre,Salmonella typhimurium, Escherichia coli, человеческая, и Saccharomyces cerevisiae. Фиг. 4 показывает результаты комплементации мутанта Escherichia coli, лишенного хинолятфосфорибозил-трансферазы (ТН 265), с кДНК NtQPTI. Клетки трансформированы экспрессионным вектором, несущим NtQPTI; рост трансформированных клеток ТН 265, экспрессирующих NtQPTI, на минимальной среде, лишенной никотиновой кислоты, показывает, чтоNtQPTI кодирует ХФРТазу. На фиг. 5 сравниваются содержание никотина и относительное установившееся содержание мРНК NtQPTI в мутантах табака Nic1 иNic1-Nic2- (nic1/nic1 nic2/nic2). Сплошные прямоугольники показывают содержание транскриптов мРНК; заштрихованные прямоугольники показывают содержание никотина. Фиг. 6 является диаграммой относительного содержания мРНК NtQPTI со временем в растениях табака с прищипанной верхушкой по сравнению с неприщипанными контрольными растениями. Сплошные прямоугольники показывают содержание транскриптов мРНК; заштрихованные прямоугольники показывают содержание никотина. Подробное описание изобретения Никотин продуцируется в растениях табака путем конденсации никотиновой кислоты и 4-метиламинобутанала. Каскад реакций биосинтеза, приводящий к образованию никотина, поясняется на фиг. 1. Два регуляторных локуса(Nic1 и Nic2) действуют как кодоминантные регуляторы образования никотина. Ферментные анализы корней простых и двойных мутантовNic показывают, что активность двух ферментов хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) и путресценс-метилтрансферазы (ПМТазы) прямо пропорциональна уровню бисинтеза никотина. Сравнение ферментативной активности в тканях табака (корень и каллюс) с различной способностью к синтезу никотина показывает,что активность ХФРТазы строго соотносится с содержанием никотина (Wagner and Wagner, 5Physiol., 64:236 (1979) показали, что содержание ХФРТазы в корнях мутантов с низким содержанием никотина пропорционально содержанию никотина в листьях. Настоящее изобретение включает последовательность новой кДНК (ПОСЛЕД.1),кодирующей растительную хинолятфосфорибозил-трансферазу (ХФРТазу) ПОСЛЕД.2. Так как активность ХФРТазы строго соотносится с содержанием никотина, создание трансгенных растений табака, в которых содержание ХФРТазы в корнях понижено (по сравнению с содержанием в растениях дикого типа), приведет к растениям с пониженным содержанием никотина в листьях. Настоящее изобретение относится к способам и нуклеотидным конструкциям для получения таких трансгенных растений, а также к таким трансгенным растениям. Такие способы включают экспрессию антисмысловой РНКNtQPTI, которая снижает количество ХФРТазы в корнях табака. Кроме того, никотин обнаружен в видах и семействах растений, не относящихся к табаку, хотя его количество в них, как правило, значительно меньше, чем в N. tabacum. Настоящее изобретение также относится к молекулам смысловой и антисмысловой рекомбинантной ДНК, кодирующим ХФРТазу, или к молекулам антисмысловой РНК ХФРТазы, и к векторам, содержащим эти молекулы рекомбинантной ДНК, а также к трансгенным растительным клеткам и растениям, трансформированным этими молекулами ДНК и векторами. Трансгенные клетки и растения табака по данному изобретению характеризуются более низким или более высоким содержанием никотина,чем в нетрансформированных контрольных клетках и растений табака. Растения табака с исключительно низким уровнем продуцирования никотина или не продуцирующие никотин привлекательны как реципиенты для трансгенов, экспрессирующих коммерчески ценные продукты, такие как фармацевтические средства, компоненты косметических средств или пищевые добавки. Табак привлекателен в качестве растения-реципиента для трансгена, кодирующего нужный продукт,так как табак легко поддается обработке методами генной инженерии и продуцирует весьма большую биомассу на акр; растения табака с пониженными ресурсами, предназначенными для продуцирования никотина, соответственно,будут иметь большие ресурсы, доступные для продуцирования трансгенных продуктов. Способы трансформации табака трансгенами, продуцирующими нужные продукты, известны в технике; любой подходящий метод можно использовать для растений табака с низким содержанием никотина настоящего изобретения. Растения табака, в соответствии с настоящим изобретением, c пониженной экспрессией ХФРТазы и пониженным содержанием никоти 004652 6 на будут нужны при получении табачных изделий с пониженным содержанием никотина. Растения табака по настоящему изобретению подойдут для применения в любом традиционном табачном изделии, включая, но не ограничиваясь перечисленным, трубочный, сигарный и сигаретный табак, и жевательный табак, который может быть любой формы, включая листовой табак, скрошенный или резаный табак. Конструкции настоящего изобретения также могут быть полезны при получении трансгенных растений с повышенной экспрессией ХФРТазы и повышенным содержанием никотина в растении. Такие конструкции, способы с использованием этих конструкций и растения, полученные таким образом, могут понадобиться при получении табачных изделий с измененным содержанием никотина или при получении растений с содержанием никотина,повышенным с целью получения инсектицидного действия. Авторы обнаружили, что ген TobRD2 (см.Conkling et al., Plant Phys., 93, 1203 (1990 кодирует ХФРТазу Nicotiana tabacum и снабжает его последовательностью кДНК NtQPTI (раньше названную TobRD2) и аминокислотной последовательностью кодируемого фермента. Сравнение аминокислотной последовательностиNtQPTI с базой данных банка генов показывает ограниченное подобие последовательностей с бактериальными белками, которые кодируют хинолятфосфорибозил-трансферазу (ХФРТазу)(фиг. 3). Хинолятфосфорибозил-трансфераза необходима для биосинтеза de novo никотинадениндинуклеотида (NAD) как в прокариотах, так и в эукариотах. В табаке высокое содержание ХФРТазы обнаруживается в корнях, но не в листьях. Для того чтобы определить, что NtQPTI кодирует ХФРТазу, авторы изобретения использовали штамм бактерий Escherichia coli (ТН 265),являющийся мутантом с утраченной хинолятфосфорибозил-трансферазой (nadC-). Этот мутант не может расти на минимальной среде, не содержащей никотиновой кислоты. Однако экспрессия белка NtQPTI в этом бактериальном штамме предоставляет фенотип NadC+ (фиг. 4),что подтверждает, что NtQPTI кодирует ХФРТазу. Авторы изобретения исследовали действие мутантов Nic1 и Nic2 в табаке и влияние прищипки верхушек растений табака на установившееся содержание мРНК NtQPTI и содержание никотина. (Известно, что удаление апикального доминирования посредством прищипки верхушек в начале цветения приводит к повышенному уровню биосинтеза и переноса никотина в табаке и является обычной практикой в производстве табака. Если NtQPTI действительно участвует в биосинтезе никотина, следует ожидать, что (1) содержание мРНК NtQPTI будет ниже в двойных мутантах Nic1/Nic2, и (2) 7 содержание мРНК NtQPTI будет возрастать после прищипки верхушек. Обнаружено, что содержание мРНК NtQPTI в двойных мутантахNic1/Nic2 составляет приблизительно 25% от содержания в диком типе (фиг. 5). Кроме того, в пределах 6 ч после прищипки верхушек содержание мРНК NtQPTI в растениях табака повышается примерно в 8 раз. Следовательно, установлено, что NtQPTI является ключевым геномрегулятором в каскаде реакций биосинтеза никотина. Трансгенные растительные клетки и растения Регуляции экспрессии гена в геномах растительной клетки можно достичь путем интеграции гетерологичной ДНК под транскрипционным контролем промотора, который действует в хозяине, и в котором транскрибирующаяся цепь гетерологичной ДНК комплементарна к цепи ДНК, которая транскрибируется от регулируемого эндогенного гена. Введенная ДНК,отнесенная к антисмысловой ДНК, обеспечивает последовательность РНК, комплементарную к естественно продуцируемой (эндогенной) мРНК и ингибирующую экспрессию эндогенной мРНК. Механизм такой регуляции экспрессии гена с помощью антисмысловой ДНК выяснен не до конца. Несмотря на отсутствие желания придерживаться какой-либо определенной теории, нужно отметить, что теория антисмысловой регуляции предполагает, что транскрипция антисмысловой ДНК продуцирует молекулы РНК, которые присоединяются и предупреждают или ингибируют транскрипцию молекул эндогенной мРНК. В способах настоящего изобретения антисмысловой продукт может быть комплементарным к кодирующим или некодирующим (или к тем и другим) частям встречающейся в природе РНК-мишени. Антисмысловая конструкция может быть введена в растительные клетки любым подходящим способом и может быть интегрирована в растительный геном для индуцируемой или конститутивной транскрипции антисмысловой последовательности. См., например, патенты США 5453566 и 5107065, Shewmaker etal. (включены в настоящее описание в качестве ссылок). Как принято здесь, экзогенной или гетерологичной ДНК (или РНК) называется ДНК (или РНК), введенная в клетку (или в предшественника клетки) благодаря усилиям человека. Такая гетерологичная ДНК может являться копией последовательности, которая обнаружена в трансформируемой клетке как естественная, или ее фрагментов. Для того чтобы получить растение табака с пониженным содержанием ХФРТазы и, таким образом, более низким содержанием никотина,чем в нетрансформированном контрольном растении табака, клетку табака можно трансформировать антисмысловой транскрипционной ХФРТ-единицей, содержащей неполную после 004652 8 довательность кДНК ХФРТ, полноразмерную последовательность кДНК ХФРТ, неполную хромосомную последовательность ХФРТ или полноразмерную хромосомную последовательность ХФРТ, в антисмысловой ориентации с соответствующими функционально связанными регуляторными последовательностями. Подходящими регуляторными последовательностями являются последовательность инициации транскрипции ("промотор"), функционирующая в трансформируемом растении, и последовательность терминации полиаденилирования/транскрипции. Затем для идентификации клонов, несущих последовательности ХФРТазы в антисмысловой ориентации, функционально связанные с регуляторными последовательностями, используют стандартные методы, такие как рестрикционное картирование, Саузернблоттинг и анализ нуклеотидной последовательности. Затем из успешно трансформированных клеток регенерируют растения табака. Наиболее предпочтительно, когда используемая антисмысловая последовательность комплементарна к эндогенной последовательности, однако, небольшие изменения в экзогенной и эндогенной последовательностях можно допустить. Предпочтительно, чтобы последовательность антисмысловой ДНК была достаточно подобна последовательности, способной к связыванию с эндогенной последовательностью в регулируемой клетке, в строгих условиях, как описано ниже. Антисмысловую технологию используют в ряде лабораторий для создания трансгенных растений, характеризующихся количеством специфических ферментов ниже естественного. Например, растения с пониженным уровнем хальконсинтазы - фермента биосинтетического каскада реакций образования цветкового пигмента - получены путем инсерции антисмыслового гена хальконсинтазы в геном табака и петунии. Эти трансгенные растения табака и петунии образуют цветы с окраской слабее нормальной (Van der Krol et al., "An Anti-SenseChalcone Synthase Gene in Transgenic Plants Inhibits Flower Pigmentation", Nature, 333, pp. 86669 (1988. Технология антисмысловых РНК также успешно используется для подавления образования фермента полигалактуроназы в томатах (Smith et al., "Antisense RNA InhibitionNatl. Acad. Sci. USA, 85, pp. 8805-09 (1988 и малой субъединицы фермента рибулозбисфосфаткарбоксилазы в табаке (Rodermel et al., "Nuclear-Organelle Interactions: Nuclear AntisenseEnzyme Levels in Transformed Tobacco Plants",Cell, 55, pp. 673-81 (1988. С другой стороны,трансгенные растения, отличающиеся количест 9 вом этого фермента, превышающим нормальное, можно создать путем трансформации растений геном для этого фермента в смысловой(т.е., в нормальной) ориентации. Содержание никотина в трансгенных растениях табака по настоящему изобретению можно определить посредством стандартных проб на никотин. Трансформированные растения, в которых содержание ХФРТазы снижено по сравнению с нетрансформированными контрольными растениями, соответственно, будут иметь пониженное содержание никотина по сравнению с контролем; трансформированные растения, в которых содержание ХФРТазы повышено по сравнению с нетрансформированными контрольными растениями, соответственно, будут иметь повышенное содержание никотина по сравнению с контролем. Гетерологичную последовательность, используемую в антисмысловых способах настоящего изобретения, можно выбрать с таким расчетом, чтобы получить продукт РНК, комплементарный к полной последовательности мРНК ХФРТазы или к ее части. Последовательность может быть комплементарной к любой следующей последовательности природной матричной РНК, т.е. она может быть комплементарной к последовательности эндогенной мРНК, ближайшей к 5'-концу сайта кэпирования, в прямом направлении от сайта кэпирования, между сайтом кэпирования и инициирующим кодоном, и может перекрывать всю или только часть некодирующей области, может быть мостиком между некодирующей и кодирующей областью, быть комплементарной ко всей или к части кодирующей области, комплементарной к 3'-концу кодирующей области или комплементарной к 3'-нетранслируемой области мРНК. Соответствующие антисмысловые последовательности могут состоять по меньшей мере примерно из 13 до примерно 15 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 16 до примерно 21 нуклеотида, по меньшей мере примерно из 20 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 30 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 50 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 75 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 100 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 125 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 150 нуклеотидов, по меньшей мере примерно из 200 нуклеотидов или из большего их числа. Кроме того, последовательности можно удлинить или укоротить по их 3'- или 5'концам. Конкретная антисмысловая последовательность и длина антисмысловой последовательности будут изменяться в зависимости от необходимой степени ингибирования, устойчивости антисмысловой последовательности и подобных факторов. Специалист в этой области техники при выборе соответствующих антисмысловых последовательностей ХФРТазы бу 004652 10 дет руководствоваться возможностью применения методов, доступных в технике, и приведенными здесь сведениями. В соответствии с фиг. 2 А и приведенной на ней ПОСЛЕД.1, олигонуклеотид изобретения может представлять собой непрерывный фрагмент последовательности кДНК ХФРТазы в антисмысловой ориентации,любой длины, которой достаточно для достижения необходимого действия при трансформации в растительную клетку-реципиента. Настоящее изобретение также можно использовать при способах смысловой косупрессии продуцирования никотина. Смысловые ДНК, используемые при осуществлении настоящего изобретения, имеют достаточную длину, чтобы, когда экспрессируются в растительных клетках, подавлять в этой растительной клетке нативную экспрессию растительного белка ХФРТазы, как описано здесь. Такие смысловые ДНК могут представлять собой, по существу, полную геномную или комплементарную ДНК, кодирующую фермент ХФРТазу, или ее фрагмент, причем такие фрагменты, как правило, имеют длину по меньшей мере в 15 нуклеотидов. Способы установления длины смысловой ДНК, которая приведет к подавлению экспрессии нативного гена в клетке, доступны специалистам в этой области техники. В другом варианте воплощения настоящего изобретения клетки растения Nicotiana трансформируются ДНК-конструкцией, содержащей сегмент ДНК, кодирующий молекулу ферментной РНК (т.е., "рибозим"), которая направлена против (т.е. расщепляет) транскрипта мРНК ДНК, кодирующей растительную ХФРТазу, как описано здесь. Рибозимы содержат связывающие субстрат домены, которые связываются с доступными областями мРНКмишени, и домены, которые катализируют расщепление РНК, предотвращая трансляцию и продуцирование белка. Связывающие домены могут содержать антисмысловые последовательности, комплементарные к последовательности мРНК-мишени; каталитический мотив может представлять собой молотообразный мотив или другие мотивы, такие как шпилькообразный мотив. Сайты рибозимного расщепления в пределах РНК-мишени сначала можно идентифицировать путем сканирования молекулымишени на сайты расщепления рибозимом (например, последовательности GUA, GUU илиGUC). Сразу после идентификации можно оценить короткие последовательности РНК из 15,20, 30 или большего числа рибонуклеотидов,соответствующие области гена-мишени, содержащей сайт расщепления, на предсказанные структурные особенности. Пригодность предполагаемых мишеней также можно оценить путем тестирования их доступности для гибридизации с комплементарными олигонуклеотидами,с использованием анализов с рибонуклеазной защитой, известных в технике. ДНК, кодирую 11 щую молекулы ферментной РНК, можно получить в соответствии с известными методами. См., например, Т. Cech et аl., патент США 4987071; Keene et al., патент США 5559021; Donson et al., патент США 5589367; Torrence et al., патент США 5583032; Joyce, патент США 5580967;al., патент США 5591601; и патент США 5622854 (все патенты включены в настоящее описание в качестве ссылок). Продуцирование такой молекулы ферментной РНК в растительной клетке и срыв продуцирования белка ХФРТазы снижает активность ХФРТазы в растительных клетках, по существу, таким же образом, как продуцирование молекулы антисмысловой РНК, т.е. путем разрыва трансляции мРНК в клетке, продуцирующей фермент. Термин "рибозим" здесь используется для описания содержащей РНК нуклеиновой кислоты, которая функционирует как фермент (такой как эндорибонуклеаза) и может использоваться для реципрокного обмена с "молекулой ферментной РНК". Настоящее изобретение также относится к ДНК, кодирующей рибозимы, ДНК, кодирующей рибозимы, которая вставлена в экспрессионный вектор, клеткам-хозяевам, содержащим такие векторы, и способам снижения продуцирования ХФРТазы в растениях с использованием рибозимов. Нуклеотидные последовательности, используемые при осуществлении настоящего изобретения, включают последовательности,подобные ПОСЛЕД.1, и кодирующие белок,обладающий активностью хинолятфосфорибозил-трансферазы. Это определение подразумевает охват природных аллельных вариаций в белках ХФРТазах. Таким образом, последовательности ДНК, которые гибридизируют с ДНК ПОСЛЕД.1 и кодируют экспрессию ХФРТазы, в частности, растительных ферментов ХФРТаз, также могут использоваться при осуществлении настоящего изобретения. Могут существовать многие формы фермента ХФРТ табака. Может существовать множество форм фермента из-за посттрансляционной модификации одного генного продукта или из-за множества форм гена NtQPTI. Условия, которые позволяют последовательностям других ДНК, кодирующих экспрессию белка с активностью ХФРТазы, гибридизировать с ДНК ПОСЛЕД.1 или с другими последовательностями ДНК, кодирующими белок,данный в виде ПОСЛЕД.2, можно определить обычным способом. Например, гибридизацию таких последовательностей можно осуществить в условиях менее строгих или даже в строгих условиях (например, в условиях, представленных строгой промывкой раствором 0,3 М NaCl, 0,03 М цитрата натрия, 0,1% ДСН, при 60 С или даже при 70 С, ДНК, кодирующей белок, приведенный здесь как ПОСЛЕД.2, insitu при стандартном анализе гибридизации; см.,например, J. Sambrook et al Molecular Cloning,A Laboratory Manual (2d Ed. 1989) (Cold SpringHarbor Laboratory. Вообще, такие последовательности будут по меньшей мере на 65% подобны, на 75% подобны, на 80% подобны, на 85% подобны, на 90% подобны, или даже на 95% или больше подобны последовательности,приведенной здесь как ПОСЛЕД.1, или последовательностям ДНК, кодирующим белки ПОСЛЕД.2. (Определения подобия последовательностей проводятся с двумя разложенными в ряд последовательностями по их максимальному совпадению; причем гэпы в любой из двух последовательностей при максимальном соответствии подходят под пару. Длина гэпов 10 или меньше является предпочтительной, более предпочтительна длина гэпов 5 или меньше, и еще предпочтительнее длина гэпов 2 или меньше.) Пригодны различные процедуры гибридизации, предусматривающие выделение клонов кДНК, в которых содержание мРНК низкое примерно 0,05% поли (А+) РНК. См. М. Conkling et al., Plant Physiol., 93, 1203-1211 (1990). Коротко, библиотеки кДНК скринируют с использованием одноцепочечных кДНК-зондов обратно транскрибирующейся мРНК из растительной ткани (например, корней и/или листьев). Для дифференциального скрининга нитроцеллюлозную или нейлоновую мембрану смачивают в 5xSSC, помещают в 96-луночный планшет с отсосом, в каждую лунку помещают 150 мкл стационарной ночной культуры, перенесенной с основного планшета, и применяют вакуум до тех пор, пока вся жидкость не пройдет через фильтр. В каждую лунку помещают 150 мкл денатурирующего раствора (0,5 МNaOH, 1,5 М NaCl) с использованием многопозиционной пипетки и оставляют примерно на 3 мин. Применяют отсос, как описано выше, и фильтр удаляют и нейтрализуют в 0,5 М трисНСl (рН 8,0), 1,5 М NaCl. Затем его сушат в течение 2 ч в вакууме и инкубируют с соответствующими зондами. При использовании мембранных нейлоновых фильтров и хранении основных планшетов при -70 С в 7% ДМСО фильтры можно скринировать много раз со многими зондами и извлекать соответствующие клоны после нескольких лет хранения. Используемый здесь термин "ген" относится к последовательности ДНК, включающей(1) регуляторные сигналы в обратном направлении (5'), в том числе, промотор, (2) кодирующую область, определяющую продукт, белок или РНК гена, (3) области в прямом направлении (3'), в том числе, сигналы транскрипции,терминации и полиаденилирования, и (4) ассоциированные последовательности, необходимые для эффективной и специфичной экспрессии. Последовательность ДНК настоящего изобретения может состоять, по существу, из полу 13 ченной здесь последовательности (ПОСЛЕД.1) или эквивалентных нуклеотидных последовательностей, представляющих аллели или полиморфные варианты этих генов, или их кодирующих областей. Использование фразы "значительное подобие последовательностей" в настоящем описании и в формуле изобретения означает, что последовательности ДНК, РНК или аминокислотные последовательности, в которых есть незначительные и не имеющие значения отклонения последовательностей от фактических последовательностей, описанных и заявленных здесь,рассматриваются как эквивалентные последовательностям настоящего изобретения. С этой точки зрения фраза "незначительные и не имеющие значения отклонения последовательностей" означает, что "подобные" последовательности (т.е. последовательности, в которых имеется значительное подобие последовательностей с ДНК, РНК или белками, описываемыми и рассматриваемыми здесь) будут функционально эквивалентны последовательностям,описанным и заявленным в настоящем изобретении. Функционально эквивалентные последовательности будут функционировать, по существу, одинаково, с образованием, по существу,таких же композиций, каковы композиции нуклеиновых кислот и аминокислот, описанные и заявленные здесь. Описанные здесь последовательности ДНК можно трансформировать во многие клеткихозяева. Многие подходящие клетки-хозяева с нужными свойствами в отношении роста и обработки легко доступны в технике. Использование фразы "выделенный" или"по существу, чистый" в настоящем описании и формуле изобретения в отношении модификатора ДНК, РНК, полипептидов или белков, означает, что ДНК, РНК, полипептиды или белки с таким определением выделены из своей invivo клеточной окружающей среды посредством приложения усилий человека. Используемые здесь выражения "нативная последовательность ДНК" или "природная последовательность ДНК" относятся к последовательности ДНК, которую можно выделить из нетрансгенных клеток или ткани. Нативные последовательности ДНК представляют собой последовательности, которые не изменены искусственно, например, путем сайтнаправленнoго мутагенеза. Когда нативные последовательности ДНК идентифицированы, молекулы ДНК с нативными последовательностями ДНК можно синтезировать химически или получить с использованием известных в технике процедур с рекомбинантными ДНК. Используемая здесь нативная последовательность ДНК растения является последовательностью, которую можно выделить из нетрансгенных растительных клеток или ткани. Используемая здесь нативная последовательность ДНК табака является по 004652 14 следовательностью, которую можно выделить из нетрансгенных клеток или ткани табака. ДНК-конструкции или "транскрипционные кассеты" настоящего изобретения включают, в направлении транскрипции 5'-3', промотор, описанный здесь, описанную здесь последовательность ДНК, функционально связанную с промотором, и, необязательно, последовательность терминации, включающую стоп-сигнал для РНК-полимеразы и сигнал полиаденилирования для полиаденилазы. Все эти регуляторные области должны быть способны работать в клетках трансформируемой ткани. Любой подходящий сигнал терминации может быть использован при осуществлении настоящего изобретения, причем его примерами являются, но не ограничиваются перечисленным, терминатор нопалин-синтаза (nоs), терминатор октапинсинтаза (osc), терминатор CaMV, или нативные сигналы терминации, полученные от того же гена, что и область инициации транскрипции,или полученные от другого гена. См., например,Rezian et al. (1988), цит. выше, или Rodermel etal. (1988), цит. выше. Используемый здесь термин "функционально связанные" относится к последовательностям ДНК в молекуле отдельной ДНК, которые связаны таким образом, что функция одной влияет на функцию другой. Таким образом,промотор является функционально связанным с ДНК, когда он способен воздействовать на транскрипцию этой ДНК (т.е. ДНК находится под транскрипционным контролем промотора). Говорят, что промотор находится "в обратном направлении" от ДНК, о которой, в свою очередь, говорят, что она находится "в прямом направлении" от промотора. Транскрипционная кассета может быть представлена в ДНК-конструкции, которая также имеет по меньшей мере одну репликационную систему. Для удобства, обычно получают репликационную систему, функциональную вEscherichia coli, такую как ColEl, pSC101, pACYC184, или подобную систему. При этом на каждой стадии после каждой манипуляции полученную конструкцию можно клонировать,секвенировать и определить правильность манипуляции. Кроме того, или вместо репликационной системы Escherichia coli, можно использовать широкий ряд хозяев репликационной системы, таких как репликационные системы несовместимых плазмид Р-1,например,pRK290. В дополнение к репликационной системе часто будет присутствовать по меньшей мере один маркер, который может быть полезным в одном или нескольких хозяевах, или разные маркеры для отдельных хозяев. Иными словами, можно использовать один маркер для селекции в прокариотном хозяине, в то время как другой маркер можно использовать для селекции в эукариотном хозяине, в частности, в хозяине-растении. Маркеры могут быть защи 15 той от биоцидов, таких как антибиотики, токсины, тяжелые металлы или подобные; могут обеспечивать комплементацию путем придания прототрофности ауксотрофному хозяину; или могут давать видимый фенотип через продуцирование нового соединения в растении. Различные фрагменты, содержащие различные конструкции - транскрипционные кассеты, маркеры и подобное, можно ввести последовательно с помощью расщепления рестрикционными ферментами соответствующей репликационной системы и вставки определенной конструкции или фрагмента в доступный сайт. После лигирования и клонирования ДНКконструкцию можно выделить для дальнейших действий. Примеры всех эти методов широко представлены в литературе, например, в работеLaboratory). Векторы, которые можно использовать для трансформации растительной ткани нуклеотидными конструкциями настоящего изобретения,включают как векторы Agrobacterium, так и баллистические векторы, а также векторы, пригодные для опосредованной ДНК трансформации. Термин "промотор" относится к области последовательности ДНК, которая включает необходимые сигналы для эффективной экспрессии кодирующей последовательности. Промотор может включать последовательности,с которыми связывается РНК-полимераза, но не ограничивается такими последовательностями,и может включать области, с которыми связываются другие регуляторные белки, вместе с областями, участвующими в контроле трансляции белка, и может включать кодирующие последовательности. Промоторы, используемые при осуществлении настоящего изобретения, могут быть конститутивно активными промоторами. Доступны многие конститутивно активные промоторы,функционирующие в растениях. Предпочтительным примером является промотор 35S вируса мозаики цветной капусты (CaMV), который экспрессируется конститутивно в большинстве растительных тканей. С другой стороны,промотор может быть специфическим для корней промотором или промотором, специфическим для кортекса корней, что подробнее поясняется ниже. Антисмысловые последовательности экспрессируются в трансгенных растениях табака с использованием промотора 35S вируса мозаики цветной капусты (CaMV). См., например, e.g.,Cornelissen et al., "Both RNA Level and Translation Efficiency are Reduced by Anti-Sense RNA inChalcone Synthase Gene in Transgenic Plants Inhibits Flower Pigmentation", Nature 333, pp. 86669 (1988). Для экспрессии ХФРТазы в трансформированных клетках и растениях табака данного изобретения предпочтительно применение промотора 35S CaMV. Подробно описано применение промотора CaMV для экспрессии других рекомбинантных генов в корнях табака (Lam etof the Nicotiana plumbaginifolia rbcS-8B Gene",Mol. Gen. Genet., 214, pp. 16-23 (1988. Другие промоторы, активные только в тканях корней (специфические для корней промоторы) также, в частности, подходят для способов настоящего изобретения. См., например,патент США 5459252, Conkling et al.; Yamamoto et al.; The Plant Cell, 3:371 (1991). Также используется промотор, специфический для кортекса корней. См., например, заявку на патент США, per.08/508786, Conklinq et al.,теперь принятую на рассмотрение; РСТ WO 9705261. Все цитированные здесь патенты включены в настоящее описание в качестве ссылок. Молекулы рекомбинантной ДНК ХФРТазы и векторы, используемые для получения трансформированных клеток и растений табака данного изобретения, также могут содержать доминантный селектируемый ген-маркер. Подходящие для применения в табаке доминантные селектируемые гены-маркеры включают, среди прочих, гены устойчивости к антибиотикам,кодирующие неомицин-фосфотрансферазу(NPTII), гидромицин-фосфотрансферазу (НРТ) и хлорамфеникол-ацетилтрансферазу (CAT). Другим хорошо известным доминантным селектируемым геном-маркером, подходящим для применения в табаке, является мутантный ген дигидрофолат-редуктазы, который кодирует устойчивую к метотрексату дигидрофолатредуктазу. Векторы ДНК, содержащие подходящие гены устойчивости к антибиотикам, и соответствующие антибиотики являются коммерчески доступными. Трансформированные клетки табака отбирают из ближайшей популяции нетрансформированных клеток, помещая смешанную популяцию клеток в культуральную среду, содержащую соответствующую концентрацию антибио 17 тика (или другого соединения, естественно токсичного для клеток табака), устойчивость против которого придает продукт выбранного селектируемого гена-маркера. Таким образом,только эти трансформированные клетки табака будут выживать и размножаться. Способы получения рекомбинантных растений настоящего изобретения, вообще, включают, во-первых, предоставление растительной клетки, способной к регенерации (причем растительная клетка, как правило, находится в ткани, способной к регенерации). Затем растительную клетку трансформируют ДНКконструкцией, содержащей транскрипционную кассету настоящего изобретения (описанную здесь), и из трансформированной растительной клетки регенерируют рекомбинантное растение. Как поясняется ниже, стадию трансформации осуществляют методами, известными в технике,включая, но не ограничиваясь перечисленным,бомбардировку растительной клетки микрочастицами, несущими транскрипционную кассету,инфицирование клетки Agrobacterium tumefaciences, содержащим Ti-плазмиду, несущую транскрипционную кассету, или любым другим методом, подходящим для получения трансгенного растения. Известны многие векторные системы Agrobacterium, полезные при осуществлении настоящего изобретения. Например, в патенте США 4459355 описывается способ трансформации восприимчивых растений, включая двудольные, штаммом Agrobacterium, содержащим Ti-плазмиду. Трансформация древесных растений вектором Agrobacterium описывается в патенте США 4795855. Кроме того, в патенте США 4940838, Schilperoort et al., описывается бинарный вектор Agrobacterium (т.е. вектор, в котором Agrobacterium содержит одну плазмиду, имеющую vir-область Ti-плазмиды, но не Тобласть, и вторую плазмиду, имеющую Тобласть, но не vir-область), полезный при осуществлении настоящего изобретения. Микрочастицы,несущие ДНКконструкцию настоящего изобретения, подходящие для баллистической трансформации растительной клетки, также полезны для получения трансформированных растений настоящего изобретения. Микрочастица продвигается в растительную клетку для получения трансформированной растительной клетки, и из трансформированной растительной клетки восстанавливают растение. В практике настоящего изобретения можно использовать любую подходящую методологию баллистической трансформации клетки и аппаратуру для ее осуществления. Примеры аппаратуры и процедур описываются в патенте США 4945050, Sanford and Wolf, и в патенте США 5015580, Christou et al. При использовании процедур баллистической трансформации транскрипционная кассета может быть введена в плазмиду, способную к репликации или инте 004652 18 грации в трансформируемую клетку. Примерами микрочастиц, пригодных для применения в таких системах, являются 1-5-мкм золотые шарики. ДНК-конструкцию можно осадить на микрочастицу любым подходящим способом,например, путем преципитации. Вид растения можно трансформировать ДНК-конструкцией настоящего изобретения путем опосредованной ДНК трансформации протопластов растительной клетки и последующей регенерации растения из трансформированных протопластов в соответствии с процедурами, хорошо известными в технике. Слияние протопластов табака с помощью содержащих ДНК липосом или посредством электропорации известно в технике. (Shillito et al., "Direct GeneMonocotyledonous Plants by a Number of Methods, Including Electroporation", Methods in Enzymology, 153, pp. 313-36 (1987. Здесь трансформация представляет введение экзогенной ДНК в клетки с тем, чтобы получить трансгенные клетки, устойчиво трансформированные экзогенной ДНК. Трансформированные клетки индуцируют для регенерации интактных растений табака посредством применения к культуре клеток и ткани табака методов, хорошо известных в технике. Способ регенерации растения выбирают таким образом, чтобы он был совместим со способом трансформации. Устойчивое присутствие и ориентацию последовательности ХФРТазы в трансгенных растениях табака можно проверить с помощью менделирующей наследственности последовательности ХФРТазы, которая обнаруживается стандартными методами анализа ДНК,применяемыми к потомству, получаемому при контрольных скрещиваниях. После регенерации трансгенных растений табака из трансформированных клеток введенная последовательность ДНК легко переносится в другие сорта табака обычными методами выращивания растений и без чрезмерного экспериментирования. Например, для того, чтобы проанализировать расщепление трансгена, можно вырастить регенерированные трансформированные растения (R0) до зрелости, проверить на содержание никотина и размножить инбридингом для получения растений R1. Процент растений R1, содержащих трансген, составляет гомозиготы для трансгена. Для идентификации гомозиготных растений R1 трансгенные растения R1 выращивают до зрелости и размножают инбридингом. Гомозиготные растения R1 будут давать потомство R2, где каждое растение-потомок несет трансген; потомство гетерозиготных растенийR1 будет расщепляться 3:1. Никотин служит в качестве природного пестицида, который помогает защитить растения табака от повреждения вредителями. Поэтому также может оказаться желательной дополнительная трансформация полученных данными 19 способами растений с низким содержанием никотина, или не содержащих никотин, трансгеном(таким как Bacillus thurigiensis), что будет создавать дополнительную защиту от насекомых. Предпочтительным растением для применения в способах настоящего изобретения является вид Nicotiana или табак, в том числе N. tabacum,N. rustica и N. glutinosa. Можно использовать любой штамм или сорт табака. Предпочтительны штаммы, в которых содержание никотина уже низкое, такие как двойные мутанты Nic1/Nic2. Любую растительную ткань, способную к последующему размножению клона путем органогенеза или эмбриогенеза, можно трансформировать вектором настоящего изобретения. Используемый здесь термин "органогенез" означает процесс, по которому из меристиматического центра последовательно развиваются побеги и корни; используемый здесь термин "эмбриогенез" означает процесс, по которому побеги и корни развиваются вместе, согласованно(не последовательно), или из соматических клеток, или из гамет. Конкретная выбранная ткань будет меняться в зависимости от систем размножения клонов, доступных и наиболее подходящих для конкретного трансформируемого вида. Примерами тканей-мишеней являются листовые диски, пыльца, зародыши, семядоли,гипокотили, ткань каллюса, имеющаяся метистиматическая ткань (например, верхушечные меристемы, пазушные почки и корневые меристемы) и индуцированная меристематическая ткань (например, меристема семядоли и гипокотильная метистема). Растения настоящего изобретения могут принимать множество форм. Растения могут представлять собой химеры трансформированных клеток и нетрансформированных клеток; растения могут быть клональными трансформантами (например, все трансформированные клетки содержат транскрипционную кассету); растения могут содержать привитые части трансформированных и нетрансформированных тканей (например, трансформированный корневой побег, привитый на нетрансформированный привой вида цитрусового растения). Трансформированные растения можно размножать многими способами, такими как размножение клона или классические методы выращивания. Например, первую генерацию (или Т 1) трансформированных растений можно вырастить инбриндингом и получить гомозиготную вторую генерацию (или Т 2) трансформированных растений, а затем растения Т 2 размножать классическими методами выращивания. Для облегчения выращивания транскрипционную кассету можно соединить с доминантным селектируемым маркером (таким как nptII). В свете вышеуказанного, очевидно, что растения, которые можно использовать при практическом применении настоящего изобретения, включают растения рода Nicotiana. 20 Специалистам, знакомым с методами рекомбинантных ДНК, описанными выше, будет понятно, что для создания трансгенных клеток и растений табака можно использовать полноразмерную молекулу кДНК ХФРТазы или полноразмерный хромосомный ген ХФРТазы, присоединенный в смысловой ориентации, с соответствующими функционально соединенными регуляторными последовательностями. (Специалистам в этой области техники также будет понятно, что соответствующие регуляторные последовательности для экспрессии генов в смысловой ориентации включают любую из известных эукариотных последовательностей начала трансляции, в дополнение к промотору и последовательностям терминации полиаденилирования транскрипции, описанным выше.) Такие трансформированные растения табака характеризуются повышенным содержанием ХФРТазы и, таким образом, более высоким содержанием никотина, чем нетрансформированные контрольные растения табака. Следовательно, следует иметь в виду, что использование последовательностей ДНК ХФРТазы для снижения или повышения содержания ХФРТ-фермента и, посредством этого,для снижения или повышения содержания никотина в растениях табака входит в объем настоящего изобретения. Используемый здесь термин "культура" включает множество растений настоящего изобретения и одного и того же рода, выращенных вместе на участке для агрокультуры. Под "участком для агрокультуры" подразумевается обычная делянка или теплица. Таким образом, настоящее изобретение относится к способу получения культуры растений с измененной активностью ХФРТазы и, следовательно, с повышенным или пониженным содержанием никотина по сравнению с подобной культурой нетрансформированных растений того же вида и сорта. Приведенные далее примеры даются для пояснения настоящего изобретения и не должны рассматриваться как его ограничение. Пример 1. Выделение и секвенирование. Здесь как ПОСЛЕД.1 представлена установленная последовательность кДНК TobRD2(Conkling et al., Plant Phys., 93, 1203 (1990, а расшифрованная аминокислотная последовательность представлена как ПОСЛЕД.2. Было предсказано, что расшифрованная аминокислотная последовательность представляет собой цитозолевый белок. Хотя гены растительной ХФРТазы не описаны, сравнение аминокислотной последовательности NtQPTI с базой данных банка генов (фиг. 3) показывает ограниченное подобие последовательностей с определенными бактериальными и другими белками; активность хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) показана в случае генов S. typhimurium, E. coli иN. tabacum. Кодированная NtQPTI ХФРТаза имеет подобие с расшифрованным пептидным 21 фрагментом, кодированным последовательностью EST (метка экспрессионной последовательности) Arabidopsis (инвентарный номер банка генов F20096), который может представлять часть гена ХФРТазы Arabidopsis. Пример 2. Гибридизация in situ. Для того, чтобы определить пространственное распределение транскрипта мРНКTobRD2 в различных тканях корня, осуществляют гибридизацию in situ в нетрансформированных растениях. Гибридизацию in situ антисмысловой цепи TobRD2 с мРНК TobRD2 в ткани корня проводят с использованием методов, описанных в Meyerowitz, Plant Mol. Biol.Biol. Rep., 5, 237 (1987). Корни семидневных всходов табака (Nicotiana tabacum) фиксируют в забуференном фосфатом глутаральдегиде, заливают парапластом-плюс (Monoject Inc., СентЛуис, Миссури) и делают срезы толщиной 8 мм,чтобы получить поперечные срезы, а также продольные срезы. Антисмысловые транскрипты TobRD2, синтезированные in vitro в присутствии 35S-ATP, используют в качестве зондов. Меченную РНК перед применением гидролизуют путем обработки щелочью, и получают среднюю длину в 100-200 оснований. Гибридизацию проводят в 50% формамиде в течение 16 ч при 42 С с меченной РНК с числом импульсов в минуту (чим) приблизительно 5 х 106 на миллилитр раствора для гибридизации. После выдержки предметные стекла проявляют и рассматривают в светлом и темном поле микроскопа. Сигнал гибридизации локализуется в кортикальном слое клеток в корнях (результаты не приводятся). Сравнение изображений одних и тех же срезов как в светлом, так и в темном поле показывает локализацию транскриптов TobRD2 в паренхиматозных клетках кортикального слоя корней. Сигнал гибридизации в эпидермисе или стеле не обнаруживается. Пример 3. Содержание мРНК TobRD2 в мутантах табака Nic1 и Nic2 и корреляция с содержанием никотина. Проверяют стационарное содержание мРНК TobRD2 в мутантах растений табака Nic1 и Nic2. Известно, что Nic1 и Nic2 регулируют активность хинолятфосфорибозил-трансферазы и активность путресценс-метилтрансферазы и являются кодоминантными регуляторами продуцирования никотина. Полученные результаты приводятся на фиг. 5 А и 5 Б и показывают, что экспрессия TobRD2 регулируется Nic1 и Nic2. Выделяют РНК из корней растений табакаBurley 21 дикого типа (Nic1/Niс 1 Nic2/Nic2); корней Nic1- Burley 21 (nic1/nic1 Nic2/Nic2); корней Nic2- Burley 21 (Nic1/Niс 1 nic2/nic2) и корней Nic1-Nic2- Burley 21 (nic1/nic1 nic2/nic2). Четыре линии табака Burley 21 (nic) выращивают из семян в почве в течение месяца и на 1 месяц переносят в камеры для гидропоники в 22 аэрированный питательный раствор в теплице. Эти линии являются изогенными, за исключением двух локусов с низким содержанием никотина, и имеют генотипы Nic1/Niс 1 Nic2/Nic2,Nic1/Niс 1Nic2/Nic2,nic1/niс 1 nic2/nic2. Корни собирают у примерно 20 растений для каждого генотипа и объединяют для выделения РНК. Полную РНК (1 мкг) от каждого генотипа подвергают электрофорезу в 1% агарозном геле, содержащем 1,1 М формальдегида,и переносят на нейлоновую мембрану в соответствии с Sambrook et al. (1989). Мембраны гибридизируют с фрагментами меченной 32P кДНК TobRD2. Относительную плотность транскриптов TobRD2 измеряют посредством денситометрии. Фиг. 5 (темные прямоугольники) показывает относительное содержание транскриптов (по сравнению с Nic1/Nic1Nic2/Nic2) для каждого из четырех генотипов. Относительное содержание никотина (по сравнению с Nic1/Nic1Nic2/Nic2) в четырех генотипах показано заштрихованными прямоугольниками. На фиг. 5 дается графическое сравнение относительного стационарного содержания мРНК TobRD2 с использованием содержания,обнаруженного в Burley 21 дикого типа(Nic1/Nic1 Nic2/Nic2), в качестве ссылочного количества. Содержание мРНК TobRD2 в двойных мутантах Nic1/Nic2 составляет приблизительно 25% от содержания в табаке дикого типа. На фиг. 5 Б также сравнивается относительное содержание никотина в почти изогенных линиях табака, исследуемых в этом примере (темные прямоугольники показывают содержание транскрипта TobRD2; заштрихованные прямоугольники показывают содержание никотина). Существует тесная корреляция между содержанием никотина и содержанием транскрипта TobRD2. Пример 4. Влияние прищипки верхушек на содержание мРНК TobRD2. В технике хорошо известно, что удаление цветочной головки растения табака (прищипка верхушки) усиливает рост корней и повышает содержание никотина в листьях растения. Прищипка верхушки растения является обычной практикой при выращивании табака, и специалист в этой области техники может легко определить оптимальное время для прищипки верхушки данного растения табака при известном наборе условий. Растения табака (N. tabacum SR1) в течение месяца выращивают из семян в почве и переносят в горшки, содержащие песчаную почву. Растения еще в течение 2 месяцев выращивают в теплице до тех пор, пока они не начинают образовывать цветки. Затем у четырех растений удаляют цветочные головки и два узла (прищипка верхушек). Через определенное время часть корней от каждого растения собирают и объединяют для экстракции РНК. Контрольные растения не прищипывают. Полную РНК (1 мкг) 23 на каждый момент времени подвергают электрофорезу в 1% агарозном геле, содержащем 1,1 М формальдегида, и переносят на нейлоновую мембрану в соответствии с Sambrook et al.(1989). Мембраны гибридизируют с фрагментами меченной 32 Р кДНК TobRD2. Относительную плотность транскриптов измеряют посредством денситометрии. Фиг. 6 иллюстрирует относительное содержание транскрипта (по сравнению со временем ноль) для каждого отмеченного времени при прищипке верхушек (темные прямоугольники) и без прищипки (заштрихованные прямоугольники). Относительное содержание TobRD2 в ткани корней определяют через 24 ч; результаты приводятся на фиг. 6 (темные прямоугольники показывают содержание транскрипта TobRD2 в прищипанных растениях; заштрихованные прямоугольники показывают содержание транскрипта TobRD2 в неприщипанных контрольных растениях). В течение 6 ч после прищипки верхушек растений табака содержание мРНКTobRD2 в прищипанных растениях возрастает приблизительно в 8 раз; в контрольных растениях за это же время возрастания не наблюдается. Пример 5. Комплементация бактериального мутанта, лишенного ХФРТазы с ДНК ПОСЛЕД 1. Штамм Escherichia coli TH265 является мутантом, лишенным хинолятфосфорибозилтрансферазы (nadC-) , и поэтому не может расти на среде, лишенной никотиновой кислоты. Клетки TH265 трансформируют экспрессионным вектором (pWS161), содержащим ДНК ПОСЛЕД 1, или трансформируют только экспрессионным вектором (рКК 233). Рост трансформированных бактерий сравнивают с ростом трансформантов TH265 (рКК 233) и с ростом нетрансформированного мутанта TH265nadC-. Рост сравнивают на минимальной средеME (лишенной никотиновой кислоты) и на минимальной среде ME с добавлением никотиновой кислоты. Штамм Е. coli с мутацией ХФРТазы (nadC)(Hughes et al., J. Bact., 175:479 (1993). Клетки хранятся на среде LB, а компетентные клетки получают так, как описано в Sambrook et al.(1989). Экспрессионную плазмиду создают в рКК 2233 (Brosius, 1984) с кДНК TobRD2, клонированной под контролем Тас-промотора. Полученную плазмиду pWS161 трансформируют в клетки TH265. Затем трансформированные 24 клетки высевают на агаровые пластины в минимальную среду (Vogel and Bonner, 1956) без никотиновой кислоты или с добавлением никотиновой кислоты (0,0002%). На подобные пластины для использования в качестве контроля высевают одни клетки TH265 и клетки TH265,трансформированные рКК 2233. Результаты приводятся на фиг. 4. Только клетки TH265, трансформированные ДНК ПОСЛЕД.1, растут на среде, лишенной никотиновой кислоты. Эти результаты показывают, что экспрессия ДНК ПОСЛЕД.1 в бактериальных клетках TH265 придает этим клеткам фенотип NadC+, что подтверждает, что эта последовательность кодирует ХФРТазу. Поэтому название TobRD2 заменяют на NtQPTI. Пример 6. Трансформация растений табака. ДНК ПОСЛЕД.1, в антисмысловой ориентации, функционально связана с растительным промотором (35S CaMV или специфическим для кортекса корней промоторомTobRD2), и получают две различные ДНКкассеты: промотор СаМV35S/антисмысловая ПОСЛЕД.1 и промотор TobRD2/антисмысловая ПОСЛЕД.1. Отбирают для трансформации линию табака дикого типа и линию табака с низким содержанием никотина, например, табак дикого типа Burley 21 (Nic1+/Nic2+) и гомозиготныйBurley 21 nic1-/nic2-. Трансформируют много клеток растений табака от каждой линии с использованием каждой содержащей ДНК кассеты. Трансформацию проводят с использованием вектора Agrobacterium, например, бинарного вектора(придающий устойчивость к канамицину и под контролем nos-промотора (nptII. Трансформированные клетки отбирают и регенерируют в трансгенные растения табака(R0). Растения R0 выращивают до зрелости и проверяют на содержание никотина; подгруппа трансформированных растений табака обнаруживает существенно сниженное содержание никотина по сравнению с нетрансформированными контрольными растениями. Затем растения R0 размножают инбриндингом, и анализируют расщепление трансгена в потомстве R1. Потомство R1 выращивают до зрелости и размножают инбриндингом; расщепление трансгена в потомстве R2 указывает, что растения R1 являются гомозиготными.(б) ДНК, кодирующую фермент ХФРТазу растения табака с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO:2, приведенной в Перечне последовательностей;(в) ДНК, которая гибридизуется с указанными в (а) или (б) молекулами ДНК в жестких условиях, определяемых жесткостью промывки в 0,3 М NaCl, 0,03 М цитрата натрия и 0,1% SDS при 70 С;(г) ДНК, отличающуюся от указанных в (а) или (б) молекул ДНК вследствие вырожденности генетического кода; и(д) ДНК, содержащую по крайней мере 30 последовательно расположенных нуклеотидовSEQ ID NО:1. 2. Выделенная ДНК по п.1, отличающаяся тем, что характеризуется последовательностьюSEQ ID NО:1, приведенной в Перечне последовательностей. 3. Выделенная ДНК по п.1, отличающаяся тем, что кодирует фермент ХФРТазу растения табака с аминокислотной последовательностьюSEQ ID NO:2, приведенной в Перечне последовательностей. 4. Выделенная ДНК по п.1, отличающаяся тем, что гибридизуется в жестких условиях, определяемых жесткостью промывки в 0,3 МNaCl, 0,03 М цитрата натрия и 0,1% SDS при 70 С, с последовательностями по пп.2-3. 5. Выделенная ДНК по п.1, отличающаяся от последовательностей по пп.2-3 вследствие вырожденности генетического кода. 6. Выделенная молекула ДНК, кодирующая хинолятфосфорибозил-трансферазу (ХФРТазу) растения табака, содержащая по крайней мере 30 последовательно расположенных нуклеотидов SEQ ID NО:1. 7. Выделенная молекула ДНК, кодирующая хинолятфосфорибозил-трансферазу (ХФРТазу) растения табака, содержащая по крайней мере 29 50 последовательно расположенных нуклеотидов SEQ ID NО:1. 8. Экзогенная ДНК-конструкция, включающая экспрессионную кассету, содержащую в направлении 5'-3' промотор, функционирующий в растительной клетке, и ДНК по п.1, расположенную ниже указанного промотора и функционально связанную с ним. 9. Экзогенная ДНК-конструкция, включающая экспрессионную кассету, содержащую в направлении 5'-3' промотор, функционирующий в растительной клетке, и ДНК по п.1, расположенную ниже указанного промотора и функционально связанную с ним, причем указанная ДНК располагается в антисмысловой ориентации. 10. Экзогенная ДНК-конструкция, содержащая в направлении 5'-3' промотор, функционирующий в растительной клетке, и ДНК, кодирующую хинолятфосфорибозил-трансферазу табака, имеющую последовательность SEQ IDNО:1, причем указанная ДНК функционально связана с указанным промотором. 11. Экзогенная ДНК-конструкция, содержащая в направлении 5'-3' промотор, функционирующий в растительной клетке, и ДНК, кодирующую хинолятфосфорибозил-трансферазу табака, имеющую последовательность SEQ IDNО:1, причем указанная ДНК располагается в антисмысловой ориентации и функционально связана с указанным промотором. 12. Экзогенная ДНК-конструкция, включающая экспрессионную кассету, содержащую в направлении 5'-3' промотор, функционирующий в растительной клетке, и ДНК, содержащую по крайней мере 50 последовательно расположенных нуклеотидов SEQ ID NО:1, расположенную ниже указанного промотора и функционально связанную с ним. 13. Экзогенная ДНК-конструкция по любому из пп.8-12, отличающаяся тем, что указанный промотор конститутивно активен в растительных клетках. 14. Экзогенная ДНК-конструкция по любому из пп.8-12, отличающаяся тем, что указанный промотор селективно активен в клетках ткани корней растения. 15. Экзогенная ДНК-конструкция по любому из пп.8-12, отличающаяся тем, что указанный промотор селективно активен в клетках коры корней растения. 16. Экзогенная ДНК-конструкция по любому из пп.8-12, отличающаяся тем, что указанная конструкция представляет собой плазмиду. 17. Вектор для трансформации растений,включающий ДНК-конструкцию по любому из пп.8-12. 18. Вектор для трансформации растений,включающий ДНК-конструкцию по любому из пп.8-12, представляющий собой вектор на основе Agrobacterium tumefaciens. 30 19. Трансгенное растение, содержащее ДНК-конструкцию по любому из пп.8-12. 20. Трансгенная растительная клетка, содержащая ДНК-конструкцию по любому из пп.8-12. 21. Выделенный фермент хинолятфосфорибозил-трансфераза растения табака, кодируемый последовательностью ДНК, указанной в(а), (в) и (г) по п.1. 22. Выделенный фермент хинолятфосфорибозил-трансфераза растения табака, имеющий аминокислотную последовательность SEQ IDNO:2. 23. Способ получения трансгенных растительных клеток с пониженной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы),включающий получение растительных клеток, способных экспрессировать хинолятфосфорибозилтрансферазу; и трансформацию указанных растительных клеток экзогенной ДНК-конструкцией по любому из пп.8-16 с получением трансгенных клеток, имеющих пониженную экспрессию ХФРТазы по сравнению с нетрансформированными клетками. 24. Способ по п.23, отличающийся тем, что указанная растительная клетка является клеткойNicotiana tabacum. 25. Способ по п.23, отличающийся тем, что стадию трансформации осуществляют путем бомбардировки растительных клеток микрочастицами,несущими указанную ДНКконструкцию. 26. Способ по п.23, отличающийся тем, что стадию трансформации осуществляют путем инфицирования растительных клеток бактериями Agrobacterium tumefaciens, содержащими Tiплазмиду,несущую указанную ДНКконструкцию. 27. Способ по п.23, отличающийся тем, что указанные растительные клетки экспрессируют эндогенную матричную РНК хинолятфосфорибозил-трансферазы (мРНК ХФРТазы), при том,что ДНК в составе указанной конструкции комплементарна указанной мРНК ХФРТазы в области, выбранной из(а) 5'-нетранслируемой последовательности указанной мРНК ХФРТазы;(б) 3'-нетранслируемой последовательности указанной мРНК ХФРТазы и(в) транслируемой области указанной мРНК ХФРТазы. 28. Способ по п.23, отличающийся тем, что указанные растительные клетки экспрессируют эндогенную матричную РНК хинолятфосфорибозил-трансферазы (мРНК ХФРТазы), при том,что ДНК в указанной конструкции комплементарна по меньшей мере 200 нуклеотидам указанной мРНК ХФРТазы. 29. Способ получения трансгенного растения с пониженной экспрессией ХФРТазы, 31 включающий получение растительных клеток по любому из пп.23 и 24 и регенерацию из них трансгенного растения. 30. Способ получения трансгенных семян растения табака, включающий культивирование трансгенного растения по п.19, представляющего собой растение табака, с получением семян из трансгенного растения табака. 31. Трансгенное растение вида Nicotiana с пониженной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) относительно нетрансформированного контрольного растения,полученное способом по п.29. 32. Потомство трансгенного растения по п.31. 33. Семена трансгенного растения видаNicotiana с пониженной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) относительно нетрансформированного контрольного растения, причем указанное трансгенное растение является растением по п.31 или его потомством по п.32. 34. Множество растений по п.31, выращенных вместе на сельскохозяйственном поле. 35. Способ снижения экспрессии гена хинолятфосфорибозил-трансферазы в растительной клетке, включающий трансформацию растительной клетки экзогенной ДНКконструкцией по любому из пп.8-16, при том,что ДНК в составе указанной конструкции комплементарна мРНК хинолятфосфорибозилтрансферазы, эндогенной для указанной клетки,за счет чего транскрипция указанной комплементарной ДНК снижает экспрессию указанного гена хинолятфосфорибозил-трансферазы. 36. Способ получения растения видаNicotiana с пониженным содержанием никотина в листьях указанного растения, включающий выращивание растения вида Nicotiana или его потомства, причем указанное растение содержит клетки, трансформированные экзогенной ДНК-конструкцией по любому из пп.8-16, при том что ДНК в составе указанной конструкции комплементарна эндогенной матричной РНК хинолятфосфорибозил-трансферазы в указанных клетках. 37. Способ получения трансгенных растительных клеток с повышенной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы),включающий получение растительных клеток, способных экспрессировать хинолятфосфорибозилтрансферазу; и 32 трансформацию указанных растительных клеток экзогенной ДНК-конструкцией по любому из пп.8-16 с получением трансгенных клеток, имеющих повышенную экспрессию ХФРТазы по сравнению с нетрансформированными клетками. 38. Трансгенное растение вида Nicotiana с повышенной экспрессией хинолятфосфорибозил-трансферазы (ХФРТазы) относительно нетрансформированного контрольного растения,причем указанное трансгенное растение содержит растительные клетки, трансформированные экзогенной ДНК-конструкцией по любому из пп.8-16 и имеющие повышенную экспрессию ХФРТазы по сравнению с нетрансформированными клетками. 39. Потомство трансгенного растения по п.38. 40. Способ повышения экспрессии гена хинолятфосфорибозил-трансферазы в растительной клетке, включающий трансформацию растительной клетки экзогенной ДНКконструкцией по любому из пп.8-16. 41. Способ по п.40, отличающийся чем, что указанную растительную клетку получают интеграцией указанной экзогенной ДНКконструкции в геном растительной клеткихозяина. 42. Способ получения растения видаNicotiana с повышенным содержанием никотина в листьях указанного растения, включающий выращивание растения вида Nicotiana или его потомства, причем указанное растение содержит клетки, трансформированные экзогенной ДНК-конструкцией по любому из пп.8-16. 43. Трансгенное растение табака Nicotianatabacum,содержащее экзогенную ДНКконструкцию по п.12. 44. Табачный продукт, полученный из трансгенного растения табака, содержащего экзогенную ДНК-конструкцию по любому из пп.8-16. 45. Табачный продукт, полученный из трансгенного растения табака, содержащего экзогенную ДНК-конструкцию по п.12. 46. Способ получения табачного продукта со сниженным уровнем никотина, включающий получение трансгенного растения табака по п.43 и получение указанного табачного продукта из указанного растения табака.