Применение ферментированных зародышей пшеницы в ветеринарной практике

009170 Изобретение относится к новым видам применения экстракта ферментированных зародышей пшеницы, в частности в ветеринарных целях. Экстракт ферментированных зародышей пшеницы (далее называемый VET-HBM) и его получение описаны в WO 99/08694, где раскрыто его иммуностимулирующее и ингибирующее образование метастазов действие. (Указанный выше документ включен в данное описание путем ссылки.) Этот экстракт получают ферментированием зародышей пшеницы Saccharomyces cerevisiae, затем сушкой профильтрованной ферментированной жидкости. Полученный материал характеризуется содержанием 2,6-диметоксипарабензохинона, составляющим около 0,4 мг/г сухого материала. В ходе исследований авторы изобретения неожиданно обнаружили, что VET-HBM может с высокой эффективностью применяться в сельскохозяйственном животноводстве для кормления животных. VET-HBM обеспечивает более быструю прибавку веса и увеличивает устойчивость животных к заболеваниям, прежде всего к инфекционным заболеваниям. Он, в частности, служит для увеличения производства мяса и для улучшения качества мяса сельскохозяйственных животных, разводимых в промышленных масштабах, прежде всего домашней птицы и свиней, и в то же время обеспечивает лучшее использование корма (лучшее соотношение усвоения корма). Дополнительно авторы изобретения исследовали воздействие VET-HBM на инфекции, возникающие обычно на птицефермах, и неожиданно было обнаружено, что VET-HBM способен защитить животных от микоплазматических инфекций, вызываемых, в частности, Mycoplasma gallisepticum и Mycoplasmasynoviae, a также от кокцидиоза, вызванного Eimeria tenella, и способен повысить устойчивость к другим инфекционным заболеваниям домашней птицы (например, болезни Гумборо). Заражение домашней птицы М. gallisepticum и М. synoviae все еще приводит к большим экономическим потерям в птицеводстве. Из-за этой инфекции снижаются привесы и производство яиц, а смертность из-за потери невылупившихся цыплят, отбраковки при убое и т.д. увеличиваются. Повреждение эпителия дыхательных путей способствует вторичной, бактериальной инфекции, тем самым дополнительно увеличивая потери. Для уменьшения экономических потерь предлагается использование различных антибиотиков (например, тилозина, тиамулина, норфлоксацина, энрофлоксацина и т.д.). Однако в последние годы различные государства решили сократить использование антибиотиков (например, использование некоторых антибиотиков, включая тилозин, запрещено в качестве средства, увеличивающего продуктивность), и запретили использование антибиотиков, применяемых для лечения людей. По данной причине авторы изобретения исследовали действие VET-HBM, показавшего очень хорошие результаты в кормовых исследованиях против широко распространенных микоплазматических инфекций. Авторы изобретения неожиданно обнаружили, что можно предотвратить микоплазматическую инфекцию путем введения VET-HBM аналогично введению тиамутина, лучшего известного антибиотика против микоплазмы. Ввиду значительной частоты возникновения микоплазматических инфекций во всем мире, этот факт имеет большое экономическое значение. Экономические потери, вызываемые этими инфекциями, можно снизить посредством использования VET-HBM. Это может быть особенно предпочтительно в настоящее время, когда стремятся отменить использование антибиотиков в ветеринарной практике и для увеличения продуктивности. Кроме того, авторы изобретения провели исследования на свиньях в связи с Mycoplasma hyopneumoniae,которая присутствует в обычной популяции свиней и приводит к большим экономическим потерям; авторы изобретения неожиданно обнаружили, что VET-HBM был способен защитить свиней от пневмонии, вызванной М. hyopneumoniae. Кроме того, авторы изобретения исследовали действие VET-НВМ против другого паразитарного заболевания - кокцидиоза, вызванного Eimeria tenella, который представляет собой очень широко распространенное паразитарное заболевание домашней птицы. Количество случаев кокцидиоза увеличилось всюду в мире за последние десятилетия, поскольку массовое разведение максимально повысило вероятность кокцидиальной инфекции. Очень вероятно, 7 штаммов Eimeria играют роль в развитии кокцидиоза; среди них есть патогенные и менее патогенные штаммы. Среди штаммов, вызывающих геморрагический энтерит,существенное значение имеет Eimeria tenella, вызывающая кокцидиоз аппендикса. Поэтому исследования авторов изобретения были проведены на цыплятах, инфицированных чистым штаммом Eimeria tenella. Авторы изобретения неожиданно обнаружили, что выделение ооцист искусственно инфицированными цыплятами, получавшими добавку VET-HBM, значительно уменьшалось по сравнению с контролем; это значит, что разрушались промежуточные формы и паразиты Е. tenella, вызывающие большое повреждение в аппендиксе, были не способны развиваться. Следовательно, VET-HBM может быть способен защитить цыплят от серьезного заболевания, вызванного Е. tenella. В дополнение к указанному выше, авторы изобретения исследовали действие VET-HBM на изменение уровня антител у цыплят, вакцинированных против болезни Гумборо (вакциной CEVAC). Авторы изобретения обнаружили, что VET-HBM, введенный в корм, значительно увеличивал выработку антител у цыплят и вместе с увеличением содержания антител в крови он усиливал действие вакцины CEVAC в период откорма цыплят, обеспечивая животным более высокую степень защиты. Кроме того, авторы изобретения наблюдали, что введение VET-HBM значимо снижало экономические потери, вызываемые стрессовыми воздействиями (например, тепловой и транспортировочный стресс). Добавку VET-HBM по изобретению применяют, смешивая соответственно с кормами начальной,средней и конечной стадии откорма, частично или в ходе всего выкармливания. VET-HBM можно также-1 009170 применять, вводя в питьевую воду животных. Настоящее изобретение также относится к применению экстракта ферментированных зародышей пшеницы для предотвращения и/или уменьшения микоплазматических инфекций и кокцидиоза домашней птицы и для увеличения титра антител у вакцинированной домашней птицы. Экстракт ферментированных зародышей пшеницы можно преимущественно использовать для профилактики инфекций Mycoplasma gallisepticum или Mycoplasma synoviae, для профилактики и/или уменьшения кокцидиоза домашней птицы, а также для профилактики пневмонии свиней, вызванной М. hyopneumoniae. Изобретение относится к применению экстракта ферментированных зародышей пшеницы при изготовлении препаратов для указанных выше целей. Ветеринарные препараты по изобретению, содержащие экстракт ферментированных зародышей пшеницы, можно получить обычным образом, осуществляя смешивание активного ингредиента с одним или несколькими ветеринарно приемлемыми вспомогательными материалами для формирования препаратов, повышающих устойчивость животных к заболеваниям, препаратов, предотвращающих и/или лечащих микоплазматические инфекции и инфекционные воспаления, препаратов, предотвращающих и/или лечащих кокцидиоз домашних птиц, и препаратов, увеличивающих величину титра антител у вакцинированной домашней птицы. Препараты с использованием вспомогательных материалов, обычно применяемые в ветеринарной практике, могут быть в форме таблеток, пилюль, капсул, гелей или паст. Эти вспомогательные материалы включают желатин, натуральные сахара из ряда таких сахаров, как лактоза, мальтоза и декстроза, лецитин, пектин, циклодекстрин, декстран, поливинилпирролидон, ацетат поливинила, смола акации, ксантановая смола, трагакант, агар-агар, альгиновая кислота, карбоксиметилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза натрия, гидроксипропилцеллюлоза, гидроксипропилметилцеллюлоза или аналогичные производные целлюлозы, эмульгаторы, масла, жиры, в частности сложные эфиры глицерина и сложные эфиры полиглицерина, полученные из насыщенных жирных кислот. Количество компонентов в препарате может варьировать, и оно зависит от различных факторов, таких как индивидуальные особенности подлежащих лечению животных. Вводимые дозы могут зависеть,наряду с другими факторами, от размера подлежащего лечению животного и типа заболевания, которое предстоит предотвратить или лечить. Суточную дозу можно вводить в одной дозе или разделив на большее число частичных доз в сутки. Изобретение далее иллюстрируется следующими примерами, которые, однако, не предназначены для ограничения изобретения. ПримерыVET-HBM, использованный в следующих примерах, получали в соответствии со следующей технологией, которая, по существу, соответствует примеру 2 из WO 99/08694. 300 кг зародышей пшеницы, размолотых в муку (в соответствии с венгерским стандартом), и 100 кг дрожжей (Saccaromyces cerevisiae) помещали в ферментер емкостью 5 м 3 и добавляли питьевую воду, пока общий объем не достигал 4000 л. Период ферментирования составлял 18 ч, во время которого использовали постоянную аэрацию (0,5 л воздуха/л подвергаемой ферментированию жидкости/мин) и медленное перемешивание (30 об./мин). Для ингибирования пенообразования в смесь добавляли 1 л/м 3 подсолнечного масла. После прекращения аэрации и перемешивания ферментируемой массы ферментированную жидкость отделяли сначала в шнековом декантаторе, затем в сепараторе и, наконец, в стерилизующем сепараторе. Получение фракции 1. Ферментированную жидкость быстро фильтровали и ее стерильность проверяли под микроскопом. Отфильтрованная, ферментированная жидкость практически не содержала клеток, что означало, что,максимум, 1 дрожжевая клетка была обнаружена на 10 полей (микроскопа). Полученную ферментированную жидкость, которая содержала около 1,5 вес.% сухого материала, выпаривали в вакуумном конденсаторе при температуре 40-50 С и после прекращения вакуумирования содержимое кипятили при атмосферном давлении в течение примерно 15 мин. После этого определяли содержание сухого материала в растворе и добавляли столько мальтодекстрина (сначала растворенного в горячей, а затем холодной воде), чтобы содержание сухого вещества в растворе стало около 30 вес.%. После этого раствор подвергали сушке распылением во вращающейся распылительной сушилке с перемешивающей форсункой, причем температура выходящего воздуха составляла около 90 С. Полученный конечный продукт в виде порошка содержал 60 вес.% ферментированного растительного материала по изобретению и 40 вес.% мальтодекстрина. Содержание диметоксипарабензохинона, которое определяли ВЭЖХ, составило 0,15 мг/г 20% сухого материала. Получение фракции 2. Биомассу с 25-27 вес.% сухого материала, отделенного на шнековом декантаторе, сушили при соотношении 1:1 на тонкоизмельченном носителе из кукурузных хлопьев в оборудовании для сушкифлюидизации и размер его частиц доводили до диапазона от 0,2 до 0,8 мм гранулированием. Получение конечного продукта. Фракцию 1 и фракцию 2 объединяли в гомогенизаторе устройства Ldige и тщательно гомогенизировали. Содержание 2,6-диметоксипарабензохинона в препарате, полученном таким образом, составило 0,11 мг/г 20% сухого материала. Пример 1. Исследование действия против Mycoplasma gallisepticum. Исследования проводили на цыплятах Arbor Acress мясного типа, не зараженных М. synoviae. От-2 009170 сутствие у животных Mycoplasma synoviae проверяли систематическим серологическим скринингом в тесте агглютинации с помощью антигенов М. gallisepticum и М. synoviae (Invert International B.V.m.; Bomeer,The Netherlands). Кроме того, животных тестировали в иммуноферментном тесте (ELISA) на основании моноклональных антител и с использованием тестового набора MYGA (Diagnosztikum Kft, Budapest,Hungary) и набора MYSA (Svanova, Uppsala, Sweden) [Czifra, Gy. et al.: Avian Dis. 37, 680-688 (1993)]. Серологические исследования дали отрицательные результаты. Кроме того, у того же выводка, из которого происходили экспериментальные животные, пробовали выделить микоплазмы из носовой полости, трахеи и воздушного кармана 20 однодневных цыплят с использованием среды В [Emo, H., andStipkovits, L.: Acta Vet. Scand. 14, 436-449 (1973)] и сред Frey [Frey, M.C. et al.: Am. J. Vet. Res. 29, 21642171 (1068)]. Данное исследование также дало отрицательный результат. 120 животных, включенных в эксперимент, были разделены на 4 равные группы с одинаковым количеством (30-30 животных) таким образом, чтобы средний вес 4 групп не отклонялся друг от друга при использовании t критерия Стьюдента. Для заражения экспериментальных животных использовали М. gallisepticum1226, предварительно ослабленную в среде В в течение 24 ч. Содержание микроорганизмов составляло 9,5 х 108 pfu/мл (pfu = колониеобразующих единиц). Экспериментальные группы лечили и инфицировали следующим образом. Группу 1 помещали в 200-литровый ящик, который можно было герметично закрыть; в ящике распыляли 10 мл стерильной среды В, а затем животных держали в указанном ящике в течение 20 мин. Затем данную группу помещали в отдельное помещение, и животные не получали никакой обработки; эту группу рассматривали как отрицательный контроль. Группу 2 помещали в идентичный ящик, в который распыляли 10 мл бульонной культуры М. gallisepticum,затем животных держали в данном ящике в течение 20 мин. Затем данную группу помещали во второе отдельное помещение, и животные не получали никакой обработки; данную группу рассматривали в качестве контроля для мониторинга инфекции. Группу 3 инфицировали таким же образом, как группу 2, затем после помещения в третье помещение животным задавали корм для разведения цыплят, содержащим VET-HBM в концентрации 3 г/кг в ходе эксперимента. Группу 4 инфицировали таким же образом, как группу 2, затем после помещения в четвертое помещение животным задавали корм, содержащий 200 мг/кг тиамутина (Biochemie GmbH, Kubdi, Austria) в ходе эксперимента. Для определения эффективности лечения исследовали следующие показатели: клинические симптомы, изменение веса, удельные затраты корма; в дополнение к ним выполняли патоморфологические,гистологические и серологические исследования, а также повторное выделение микоплазмы. В ходе их оценки получили следующие результаты. Результаты. 1. Клиническое исследование. Клинические симптомы и возможные случаи гибели исследовали каждый день. У обработанных животных не было никаких клинических симптомов (группы 3 и 4), тогда как у инфицированной, не получившей обработки группы с 6-го дня появились респираторные симптомы, более того, по одному случаю гибели произошло на 7-й и 9-й день. 2. Привесы. Привесы были статистически значимо ниже у инфицированной, не получавшей лечение группы, чем у контрольной, не получавшей обработку группы, а также в двух обработанных VET-HBM группах. В то же самое время в двух обработанных группах прибавка была той же степени, что и в группе отрицательного контроля. 3. Удельные затраты корма. Удельные затраты корма повысились у инфицированной, не получившей обработку группы, составив 0,45 кг/кг, хотя они остались на том же уровне в обеих обработанных группах, как и в группе отрицательного контроля. 4. Патоморфологическое исследование. В конце эксперимента у всех птиц провели патоморфологическое исследование воздушного кармана и брюшины для выявления воспаления, характерного для инфекции М. gallisepticum. В группе 1 у всех животных были отрицательные результаты, тогда как в группе 2 у всех животных проявлялось воспаление воздушного кармана и брюшины различной тяжести. В получавших VET-HBM группе 3 и группе 4 развивались едва заметные патологические изменения, и их тяжесть была значительно меньше, чем у животных группы 2. Результаты, полученные у групп, обработанных соответственноVET-HBM и тиамутином, не отличались друг от друга. 5. Гистологические исследования. В группе 2 вследствие инфекции количество случаев лимфогистиоцитарного бронхита и долевой интерстициальной пневмонии значительно увеличилось по сравнению с неинфицированной группой 1. В то же время показатели в группе 3 и группе 4, обработанных соответственно VET-HBM и тиамутином,оставались на том же уровне, что и в группе 1, за исключением долевой интерстициальной пневмонии,количество случаев которой было значительно выше в группе 3, чем в контрольной группе. Группа 3 и-3 009170 группа 4 не отличались друг от друга статистически в отношении исследованных изменений. 6. Серологическое исследование. Плазму крови всех цыплят исследовали на предметном стекле в тесте агглютинации на наличие М.gallisepticum. Степень реакции определяли балльной оценкой и количество отреагировавших животных и сумму балльных оценок сравнивали по системе ЧИ. Группа 1 оставалась отрицательной до конца эксперимента. В получавших лечение группе 3 и группе 4 у значимо меньшего количества животных проявилась серологическая реакция (соответственно, 6 и 8 против 25), и балльные оценки были значительно ниже (соответственно, 6 и 11), чем в необработанной группе 2 (75 баллов). 7. Повторное выделение Mycoplasma. Повторное выделение инфекционного штамма Mycoplasma выполняли следующим образом. После инфекции через 1 ч забивали по 5 животных. Кусочки трахеи длиной по 1 см помещали в 2 мл жидкой среды В и через 3 мин встряхивания выполняли подсчет микроорганизмов в среде. В конце эксперимента делали попытку повторного выделения штамма, использованного для заражения птиц, из дыхательных органов (трахея, легкие, воздушный карман) и других органов (мозг, печень, селезенка, почки, сердце) всех цыплят таким образом, что образцы каждого из указанных органов переносили на твердую среду В с помощью тампона. Скошенные агаровые среды культивировали в течение 10 дней, а затем проводили их оценку. Часть изолятов идентифицировали эпифлюоресцентным способом с использованием специфической иммунной сыворотки. Сразу после заражения Mycoplasma не была выделена из трахеи животных группы 1. В то же время можно было выделить 1 х 102-2,7 х 103 pfu/мл М. gallisepticum из трахеи инфицированных животных группы 2. В конце эксперимента было невозможно рекультивировать использованные для инфекции штаммы у группы 1, тогда как у группы 2 их можно было рекультивировать в 64 случаях, прежде всего из трахеи,легких и воздушных карманов. С другой стороны, повторное выделение было значительно менее успешным у групп 3 и 4 (соответственно, в 10 и 3 случаях) и только из некоторых легких и трахей, но не из других внутренних органов. Между группами, обработанными соответственно VET-HBM и тиамутином,не наблюдалось существенного различия. Пример 2. Исследование эффекта против Е. tenella. 48 однодневных цыплят, разделенных на 4 группы (по 12 животных), были включены в эксперимент. Цыплят держали по группам в клетках; в ходе эксперимента температура в помещении была 28 С. В ходе откорма животные потребляли обычный начальный корм и питьевую воду без ограничений до возраста 14 дней (группа 1 и групп 2). К корму группы 3 и группы 4 добавляли 0,3 г VET-HBM на 1 кг корма. Животных группы 2 и группы 4 перорально инфицировали суспензией, содержащей 2 х 103 спорулированных ооцист Eimeria tenella. Начиная с 7-го дня от заражения, исследовали фекалии на наличие ооцист. Ежедневное количество фекалий животных, относящихся к одной и той же группе, взвешивали и гомогенизировали отдельно. Такое же количество отвешивали от фекалий каждого животного и гомогенизировали 2,5% растворомK2 Сr2 О 7. Ежедневное выделение ооцист в данной группе определяли в камере McMaster с трехразовым повторением. Результаты представлены в нижеследующей таблице. Определение ежедневного выделения ооцист в камере McMaster-4 009170 Из представленной выше таблицы видно, что развитие ооцист у инфицированной группы 4, получавшей VET-HBM, было значительно меньше (р 0,0001 и р 0,001), чем у животных инфицированной группы 2, получавших традиционный корм. В данной группе увеличение выделения ооцист значительно превышало таковое у обработанной группы во все дни, и данный более высокий уровень оставался до конца эксперимента. Измерения веса на 0-й, 7-й и 14-й дни подтвердили, что вес инфицированных животных, получавших традиционный корм, постепенно снижался до последнего дня эксперимента, тогда как в группах инфицированных и неинфицированных цыплят, потреблявших VET-HBM, были зарегистрированы значимые (р 0,001) привесы. Пример 3. Измерение уровня антител у вакцинированных цыплят. По 7 однодневных цыплят типа Ross-308 (источник поставки: Babolna, Hungary) были включены в эксперимент, причем цыплята получали однократное лечение в период нахождения в яйце вакциной против болезни Гумборо (вакцина CEVAC от компании Phylaxia, Budapest, Hungary). В основной корм половины поголовья цыплят давали VET-HBM в количестве 0,3 г/кг корма. Животные без ограничений потребляли корм и питьевую воду. У контрольных и обработанных цыплят брали кровь в первый день и через каждую неделю. Их кровь собирали отдельно, отделяли сыворотку крови центрифугированием,затем хранили при температуре -18 С до обработки. Количество антител определяли тестом ELISA. В ходе теста антиген обычно адсорбирован стенкой полистироловой 96-луночной планшеты. Подлежащие исследованию специфические антитела сыворотки крови связаны с антигеном, однако, не связанные антитела удаляются промыванием, затем систему комплектуют такой видоспецифической антиглобулиновой сывороткой, которая была конъюгирована с ферментом пероксидазой хрена или с другим ферментом. Молекулы антиглобулина-конъюгата, которые не вступали в реакцию, удаляли промыванием. Сэндвич конъюгата антигена-антитела-антиглобулина становится видимым в форме цветовой реакции после добавления субстрата фермента. В данном эксперименте для измерения использовали набор, тестирующий антитела инфекционного бурсита (наборProfFLOK IBDELISA, изготовленный KirkegaardPerry Laboratories, Guilford, UK; каталожный номер 54-81-01). Измерение проводили в соответствии с методологии, описанной выше. Для данного измерения по 50 мкл сыворотки, сенсибилизированной антигеном, добавляли в лунки планшеты. Положительные и отрицательные контрольные сыворотки помещали в лунки на переднюю часть (-1, +2, -3) и концевую часть (-94, +95, -96) планшеты ELISA. Планшеты с сывороткой инкубировали в течение 30 мин при комнатной температуре, затем их промывали промывным раствором (300 мкл), раствор оставался в лунках в течение 3 мин, затем ее сливали. Данный этап промывания повторяли через 2 мин. После этого 100 мкл конъюгата из набора добавляли в каждую лунку к образцам, затем их инкубировали в течение 30 мин при комнатной температуре и, наконец, их промывали дважды в соответствии с описанной выше процедурой. Затем 100 мкл субстрата вводили в систему. И ее инкубировали при комнатной температуре в течение 15 мин. Реакции прекращали 100 мкл останавливающего раствора. Развившийся зелено-синий цвет считывали в устройстве для считывания ELISA при длине волн 405-410 нм. Титры антител подсчитывали по полученным данным спектральной поглощательной способности, которые оценивали при еженедельном разложении. По данным измерениям можно установить, что величины титров сывороток животных, подвергнутых кровопусканию на 1-й день, были такими же, как нормальные величины контрольной группы (в среднем, 13,5). Величины титров образцов сыворотки, взятых в 1-ю неделю, увеличились по сравнению с величинами контрольной группы (в среднем, 17,4). На 2-й неделе данный рост еще увеличился по сравнению с контролем (в среднем, 21,2). На 3-ю неделю наблюдался мощный рост величин титра под влиянием лечения VET0HBM по сравнению с контролем (в среднем, 30,3). На 4-ю неделю величины титра обработанных групп утроились по сравнению с контролем (в среднем, 42,1). На 5-ю неделю величины титра были в 4 раза выше, чем величины у контроля (в среднем, 55,6). На 6-ю неделю величины титра были почти в 5 раз выше, чем в контрольной группе, измеренные на 6-й неделе (в среднем, 69,4). На основании статистической оценки, было доказано, что полученные величины были значимыми(р 0,001) и они проявили более быстрый рост по сравнению с контролем. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ 1. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для профилактики и/или лечения микоплазматических инфекций животных. 2. Применение по п.1, в котором инфекция вызвана по меньшей мере одной микоплазмой из группы, состоящей из Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma synoviae и Mycoplasma hyopneumoniae. 3. Применение по п.1 или 2, в котором животное является сельскохозяйственным животным, выбранным из группы, состоящей из крупного рогатого скота, лошадей, кроликов, поросят, свиней, бройлерных цыплят, кур, индюшек, гусей и уток. 4. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для-5 009170 лечения кокцидиоза птиц, вызываемого Eimeria tenella. 5. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для увеличения титра антител у вакцинированной домашней птицы, специфичных к инфекциям домашней птицы, таким как микоплазматические инфекции или кокцидиоз. 6. Применение по любому из пп.1-5, в котором экстракт ферментированных зародышей пшеницы получен из ферментированной жидкости и биомассы, причем указанные ферментированная жидкость и биомасса получены путем ферментирования зародышей пшеницы Saccharomyces cerevisiae. 7. Применение по любому из пп.1-6, в котором указанный препарат представляет собой корм, в котором экстракт ферментированных зародышей пшеницы находится в количестве от 0,1 до 6 г на кг корма. 8. Применение по любому из пп.1-6, в котором указанный экстракт ферментированных зародышей пшеницы используют путем его смешивания с кормом в количестве от 0,1 до 6 г на кг корма.