Способ немедикаментозного лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита

СПОСОБ НЕМЕДИКАМЕНТОЗНОГО ЛЕЧЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ХРОНИЧЕСКОГО ОРХОЭПИДИДИМИТАRU-С 2-2280470 ШОРМАНОВ И.С. и др. Острый эпидидимит: медицинские и социальные аспекты. Современные возможности патогенетической терапии. Экспериментальная и клиническая урология, 2012,3, с. 71-78 Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к урологии, и предназначено для лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита. Способ немедикаментозного лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита включает проведение антибактериальной терапии экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток, после чего производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора вводят в ушную вену экспериментального животного."НАУЧНЫЙ ЦЕНТР УРОЛОГИИ ИМЕНИ АКАДЕМИКА Б.У. ДЖАРБУСЫНОВА" (KZ)(72) Изобретатель: Алчинбаев Мырзакарим Каримович,Медеубеков Улугбек Шалхарович,Кусымжанов Суният Мирзакенович,Буйрашев Ануар Канашевич, Токтабаянов Биржан Галымович (KZ) Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к урологии, и предназначено для лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита для усовершенствования общепринятых и разработки новых методов лечения и профилактики этого заболевания у людей. Острое воспаление яичка и придатка (орхоэпидидимит) является одним из наиболее частых урологических заболеваний. Более 27% мужчин на протяжении жизни переносят эпидидимоорхит. Статистические данные о частоте заболевания свидетельствуют об актуальности его изучения с различных точек зрения: патогенетической, диагностической, лечебной, профилактической. Переход острого орхоэпидидимита в хронический чреват многими последствиям, среди которых наиболее серьезны: нарушение проходимости придатка яичка, развитие склеротического и дистрофического процессов в яичке, что приводит к нарушению репродуктивной функции этих органов на стороне поражения. Тактика лечения острого и хронического орхоэпидидимита у пациентов строго дифференцирована,в некоторых случаях при остром орхоэпидидимите выполняют эпидидимотомию, ведущую к декомпрессии органа и уменьшению остроты воспаления, а также проведение консервативного лечения путем антибиотикотерапии и физиотерапии (Чиненный В.Л. Острый эпидидимит в урологической практике - автореферат на соиск. ученой степени канд. мед. наук. - 1991. - Москва, - с. 10-15). Недостатком известного способа лечения является то, что он предназначен для лечения пациентов. В доступных патентно-информационных источниках информации аналогов способу немедикаментозного лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита не найдено. Задача изобретения - разработка немедикаментозного способа лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита, позволяющего эффективно и доступно провести лечение. Технический результат - проведение забора костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в определенном объеме, отмывание аутологичных мононуклеарных клеток костного мозга, введение их в вену ушной раковины. Способ позволяет провести лечение данной патологии. Способ немедикаментозного лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита включает проведение антибактериальной терапии экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток, при этом после этого производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора вводят в вену ушной раковины. Способ осуществляют следующим образом. В качестве объекта исследований используют беспородных кроликов, самцов, весом 3-4 кг, которым ранее осуществляют модель экспериментального хронического орхоэпидидимита путем введения в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры. Введение осуществляют в половые органы, в качестве бактериальной культуры используют смешанные культуры стафиллококк+стрептококк в титре 10 микробных тел. Клиническую картину экспериментального хронического орхоэпидидимита у экспериментального животного (кролик) определяют на 30 сутки при проведении патоморфологических и ультразвуковых исследований экспериментальных животных. На 30 сутки от начала введения в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры и при постановке диагноза экспериментального хронического орхоэпидидимита на основе патоморфологических и ультразвуковых исследований подопытным животным проводят антибактериальную терапию цефазолином в дозе 10 мг/кг, затем выполняют забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора вводят в вену ушной раковины. Пример выполнения способа. Использовано животное - кролик, самец, весом 3,5 кг. В паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл в качестве бактериальной культуры были введены смешанные культуры стафиллококк+стрептококк в титре 106 микробных тел. Клиническую картину экспериментального хронического орхоэпидидимита у данного экспериментального животного определили на 30 сутки при проведении ультразвуковых исследований. После этого животному провели антибактериальную терапию цефазолином в дозе 10 мг/кг. Затем выполнили забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделили и отмыли клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора ввели в вену ушной раковины. Результаты гистоморфологического исследования после трансплантации аутологичных мононуклеарных клеток в вену ушной раковины лабораторных животных. В материале - ткань (паренхима) яичка с нормальной фиброзной стромой, без признаков настоящего или прошлого воспаления или его организации. Сперматогенез выражен отлично во всех извитых канальцах (фиг. 1). В материале исследования - ткань яичка нормального гистологического строения. Строма яичка нежно-волокнистая, хорошо васкуляризирована, без признаков воспаления или его организации. Во всех канальцах хорошо выражен сперматогенез (слегка "запустевшие" канальцы единичны: около 5%), фиг. 2. В исследуемом материале - ткань яичка нормального гистологического строения. Строма нежноволокнистая, без признаков воспаления или его организации. Сперматогенез в извитых канальцах выражен хорошо: признаки "запустения" выражены очень слабо (около 10%), фиг. 3. В исследуемом материале - нормальная ткань яичка. Признаков воспаления или его организации в строме и в паренхиме не обнаружено. Сперматогенез выражен хорошо ("полупустых" канальцев около 5%), фиг. 4. В материале - ткань яичка без признаков бывшего или настоящего воспаления в строме и паренхиме яичка, а также в прилежащих тканях. Сперматогенез отличный (фиг. 5). В исследуемом материале - ткань яичка нормального гистологического строения, без признаков воспаления или его организации в строме и в паренхиме. Сперматогенез отличный: "полупустых" канальцев менее 5% (фиг. 6). Результаты гистоморфологии после трансплантации аутологичных мононуклеарных клеток в вену ушной раковины показывают, что при этом наблюдается положительный эффект, выражающийся в следующем: нормализация фиброзной стромы; удовлетворительная/хорошая васкуляризация стромы; уменьшение "запустевших" канальцев. Таким образом, статистически доказано, что трансплантация аутологичных мононуклеарных клеток в вену ушной раковины приводит к уменьшению и исчезновению признаков воспаления и, главным образом, улучшает сперматогенез. Экспериментальным путем установлены нормальные показатели размеров яичек, показателей скорости кровотока, индекса резистентности и пульсационного индекса у лабораторных кроликов после проведенного лечения. Разработанный способ выделения и введения аутологичных мононуклеарных клеток в вену ушной раковины лабораторных животных с целью изучения и внедрения новых методов лечения инфертильности может быть использован для экспериментального лечения этих заболеваний. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ Способ немедикаментозного лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита, отличающийся тем, что проводят антибактериальную терапию экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток, после этого производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора вводят в вену ушной раковины экспериментального животного. Извитые канальцы семенника. Окрашен гематоксилин эозином