Способ лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита

СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ХРОНИЧЕСКОГО ОРХОЭПИДИДИМИТАUrology, June 1980, vol. XV, No. 6, pp. 542547, особенно, с. 543, 544, кол.2, с. 546,кол.1 АСКАРОВ М.Б. Трансплантация аутологичных клеток костного мозга для лечения длительно незаживающих язв желудка. Автореферат дисс. доктора мед. наук,М.,2009,2001 с,[он-лайн],[найдено 14.03.2014]. Найдено в Интернет: Ярема Г.В. (KZ) Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к урологии, и предназначено для лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита для усовершенствования общепринятых и разработки новых методов лечения и профилактики этого заболевания у людей. Способ лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита включает проведение антибактериальной терапии экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток, после чего производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологичнеского раствора вводят в несколько точек паренхимы яичка. Разработанный способ выделения и введения аутологичных мононуклеарных клеток в паренхиму яичка лабораторных животных может быть использован для изучения и внедрения новых методов лечения инфертильности, а также для экспериментального лечения этих заболеваний."НАУЧНЫЙ ЦЕНТР УРОЛОГИИ ИМЕНИ АКАДЕМИКА Б.У. ДЖАРБУСЫНОВА" (KZ) Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к урологии, и предназначено для лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита для усовершенствования общепринятых и разработки новых методов лечения и профилактики этого заболевания у людей. Острое воспаление яичка и придатка (орхоэпидидимит) является одним из наиболее частых урологических заболеваний. Более 27% мужчин на протяжении жизни переносят эпидидимоорхит. Статистические данные о частоте заболевания свидетельствуют об актуальности его изучения с различных точек зрения: патогенетической, диагностической, лечебной, профилактической. Переход острого орхоэпидидимита в хронический чреват многими последствиям, среди которых наиболее серьзны нарушение проходимости придатка яичка, развитие склеротического и дистрофического процессов в яичке, что приводит к нарушению репродуктивной функции этих органов на стороне поражения. Тактика лечения острого и хронического орхоэпидидимита у пациентов строго дифференцирована,в некоторых случаях при остром орхоэпидидимите выполняют эпидидимотомию, ведущую к декомпрессии органа и уменьшению остроты воспаления, а также проводят консервативное лечение путем антибиотикотерапии и физиотерапии (Чиненный В.Л. Острый эпидидимит в урологической практике. Автореферат на соиск. ученой степени канд. мед наук, 1991, Москва, с. 10-15). Недостатком известного способа лечения является то, что он недостаточно эффективен. В доступных патентно-информационных источниках прототипа способу лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита не найдено. Задача изобретения - разработка способа лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита, позволяющего эффективно и доступно провести лечение. Способ лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита включает проведение антибактериальной терапии экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток,после чего производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологичнеского раствора вводят в несколько точек паренхимы яичка. Способ осуществляют следующим образом. В качестве объекта исследований используют беспородных кроликов - самцов весом 3-4 кг, на которых ранее осуществляют модель экспериментального хронического орхоэпидидимита путем введения в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры. Введение осуществляют в паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл, в качестве бактериальной культуры используют смешанные культуры стафиллокок+стрептококк в титре 106 микробных тел. Клиническую картину экспериментального хронического орхоэпидидимита у экспериментального животного (кролик) определяют на 30 сутки при проведении патоморфологических и ультразвуковых исследований экспериментальных животных. На 30 сутки от начала введения в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры и при постановке диагноза экспериментального хронического орхоэпидидимита на основе патоморфологических и ультразвуковых исследований подопытным животным проводят антибактериальную терапию цефазолином в дозе 10 мг/кг, затем выполняют забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологичнеского раствора вводят в несколько точек паренхимы яичка. Пример выполнения способа. Использовано животное - кролик (самец) весом 3,5 кг. В паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл в качестве бактериальной культуры были введены смешанные культуры стафиллокок+стрептококк в титре 106 микробных тел. Клиническую картину экспериментального хронического орхоэпидидимита у данного экспериментального животного определили на 30 сутки при проведении ультразвуковых исследований. После этого животному провели антибактериальную терапию цефазолином в дозе 10 мг/кг. Затем выполнели забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделили и отмыли клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологичнеского раствора ввели в несколько точек паренхимы яичка. Результаты гистоморфологического исследования после трансплантации аутологичных мононуклеарных клеток в паренхиму яичка лабораторных животных приведены ниже. В материале ткань (паренхима) яичка с нормальной фиброзной стромой без признаков настоящего или прошлого воспаления или его организации. Сперматогенез выражен отлично во всех извитых канальцах (см. фиг. 1). В материале исследования ткань яичка нормального гистологического строения. Строма яичка нежно-волокнистая, хорошо васкуляризирована, без признаков воспаления или его организации. Во всех канальцах хорошо выражен сперматогенез (слегка "запустевшие" канальцы единичны: около 5%) (см. фиг. 2). В исследуемом материале ткань яичка нормального гистологического строения. Строма нежноволокнистая, без признаков воспаления или его организации. Сперматогенез в извитых канальцах выражен хорошо: признаки "запустения" выражены очень слабо (около 10%) (см. фиг. 3). В исследуемом материале нормальная ткань яичка. Признаков воспаления или его организации в строме и в паренхиме не обнаружено. Сперматогенез выражен хорошо ("полупустых" канальцев около 5%) (см. фиг. 4). В материале ткань яичка без признаков бывшего или настоящего воспаления в строме и паренхиме яичка, а так же в прилежащих тканях. Сперматогенез отличный (см. фиг. 5). В исследуемом материале ткань яичка нормального гистологического строения, без признаков воспаления или его организации в строме и в паренхиме. Сперматогенез отличный: "полупустых" канальцев менее 5 % (см. фиг. 6). Результаты гистоморфологии после трансплантации аутологичных мононукларных клеток в паренхиму яичка показывают, что при этом наблюдается положительный эффект, выражающийся в следующем: нормализация фиброзной стромы; удовлетворительная/хорошая васкуляризация стромы; уменьшение "запустевших" канальцев. Таким образом, статистически доказано, что трансплантация аутологичных мононукларных клеток в паренхиму яичка приводит к уменьшению и исчезновению признаков воспаления и, главным образом,улучшает сперматогенез. Экспериментальным путем установлены нормальные показатели размеров яичек, показателей скорости кровотока, индекса резистентности и пульсационного индекса у лабораторных кроликов после проведенного лечения. Разработанный способ выделения и введения аутологичных мононуклеарных клеток в паренхиму яичка лабораторных животных с целью изучения и внедрения новых методов лечения инфертильности и может быть использован для экспериментального лечения этих заболеваний. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ Способ лечения экспериментального хронического орхоэпидидимита, отличающийся тем, что проводят антибактериальную терапию экспериментального животного цефазолином в дозе 10 мг/кг веса в течение трех суток, после чего производят забор костного мозга из крыла подвздошной кости экспериментального животного в объеме 5 см 3, отделяют и отмывают клетки костного мозга и отмытые аутологичные мононуклеарные клетки костного мозга в объеме 1 мл физиологического раствора вводят в несколько точек паренхимы яичка.