Фермент, расщепляющий эндосульфированные фукозусодержащие полисахариды, способ его получения и содержащая его композиция

005580 Область изобретения Данное изобретение относится к индукторам апоптоза, противораковым лекарственным средствам и канцеростатическим лекарственным средствам, которые могут быть использованы как лекарственные препараты. Кроме того, обеспечивается способ индуцирования апоптоза, который используют, например,для выяснений механизма апоптоза и скрининга ингибиторов индукции апоптоза. Также обеспечиваются очищенные сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления и фермент,расщепляющий сульфированный фукозусодержащий полисахарид, который используют для получения продуктов расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида, и изучения их структур. Предшествующий уровень техники В последние годы, апоптоз (самодеструктивная гибель клетки или суицидальная гибель клетки) привлекает внимание в связи с изучением гибели клеточной ткани. Считается, что апоптоз представляет гибель, врожденно программируемую в генах, отличную от некроза, означающего патологическую гибель клетки. А именно, некоторые внешние или внутренние факторы приводят в действие активацию генов, программирующих апоптоз. На основе данных генов,впоследствии генный белок программированной гибели биосинтезируется и разлагается клетками per se,тем самым, вызывая гибель. Целенаправленный (осмысленный) вызов апоптоза в требуемой ткани или клетках имеет большое значение, если это возможно, поскольку тем самым могут быть спонтанно удалены излишние (ненужные) или патогенные клетки из живого организма. Проблемы, подлежащие решению с помощью изобретения Данное изобретение ставит своей целью разработку высоко безопасных соединений, обладающих действием индуцировать апоптоз, и тем самым предоставлять индукторы апоптоза, противораковые лекарственные средства и канцеростатические лекарственные средства, содержащие данные соединения, и способ индуцирования апоптоза путем использования данных соединений в качестве активного ингредиента. Кроме того, данное изобретение имеет своей целью разработку фермента, способного расщеплять соединения данного изобретения, который полезен при получении продуктов расщепления данных соединений. Способ решения данных проблем Первый аспект данного изобретения относится к ферменту, продуцируемому Altermonas sp. SN1009 (FERM BP-5747), расщепляющему эндосульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие следующие физико-химические свойства:(а) составляющий их сахарид, в основном, свободен от уроновой кислоты; и(б) в основном, не способны расщепляться фукоиданазой, продуцируемой Flavobacterium sp. SA0082 (FERM BP-5402), но не действующий на сульфированные фукозусодержащие полисахариды,имеющие следующие физико-химические свойства: составляющий их сахарид содержит уроновую кислоту и будучи расщепленными фукоиданазой, продуцируемой Flavobacterium sp. SA-0082 (FERM BP5402), они образуют по крайней мере одно из соединений, представленных следующими формулами (I),(II) и (III): причем указанный фермент имеет оптимальное значение рН в интервале от приблизительно 7 до 8 и оптимальную температуру действия в интервале от приблизительно 30 до 35. Второй аспект данного изобретения относится к ферментативной композиции, содержащей источник кальция и фермент, осуществляющий расщепление эндосульфированных фукозусодержащих полисахаридов, по первому аспекту данного изобретения. Третий аспект данного изобретения относится к способу получения фермента, расщепляющего эндосульфированные фукозусодержащие полисахариды, согласно первому аспекту данного изобретения,который включает инкубацию Alteromonas sp.-1009 (FERM ВР-5747), и выделение фермента из культуральной среды. Были получены различные очищенные сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления и затем исследованы биологические активности данных веществ. В результате этого было обнаружено, что такие вещества индуцируют апоптоз злокачественных клеток и оказывают сильное противораковое действие. Кроме того, было установлено, что сульфированные фукозусодержащие полисахариды и/или продукты их расщепления имеют сильное канцеростатическое действие. Кроме того, с их помощью удается выделить фермент, способный расщеплять сульфированные фукозусодержащие полисахариды, и данный фермент является полезным при получении продуктов расщепления данного изобретения, что является завершающим аспектом данного изобретения. Краткое описание чертежей На фиг. 1 представлены степени осаждения сульфированных фукозусодержащих полисахаридов; на фиг. 2 представлено молекулярно-массовое распределение сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, определенное способом гель-фильтрации с использованием Sephacryl S-500; на фиг. 3 представлен ИК-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U; на фиг. 4 представлен 1 ЯMP-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U; на фиг. 5 представлена картина элюирования сахаридного соединения (а), являющегося пиридил(2)-аминированным (РА-а), которое элюировано из L-колонки; на фиг. 6 представлена картина элюирования сахаридного соединения (b), являющегося пиридил(2)-аминированным (РА-b), которое элюировано из L-колонки;-2 005580 на фиг. 7 представлена картина элюирования сахаридного соединения (с), являющегося пиридил(2)-аминированным (РА-с), которое элюировано из L-колонки; на фиг. 8 представлен масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (а); на фиг. 9 представлен масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (b); на фиг. 10 представлен масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (с); на фиг. 11 представлен масс-масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (а); на фиг. 12 представлен масс-масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (b); на фиг. 13 представлен масс-масс-спектр (отрицательное измерение) сахаридного соединения (с); на фиг. 14 представлен 1H ЯМР-спектр сахаридного соединения (а); на фиг. 15 представлен 1H ЯМР-спектр сахаридного соединения (b); на фиг. 16 представлен 1H ЯМР-спектр сахаридного соединения (с); на фиг. 17 представлено молекулярно-массовое распределение сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, определенное способом гель-фильтрации с использованием Sephacryl S-500; на фиг. 18 представлен ИК-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F; на фиг. 19 представлен 1H ЯМР-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F; на фиг. 20 представлен график, который показывает зависимость относительной активности фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученного с помощью данного изобретения, от значения рН; на фиг. 21 представлен график, который показывает зависимость относительной активности фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученного с помощью данного изобретения, от температуры; на фиг. 22 представлено молекулярно-массовые распределения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, определенные способом гель-фильтрации с использованием Cellulofine GCL-300,до и после расщепления ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученным с помощью данного изобретения; на фиг. 23 представлен график, который показывает зависимость относительной активности фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученного с помощью данного изобретения, от концентрации иона кальция в реакционной смеси; на фиг. 24 представлены молекулярно-массовые распределения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, который расщеплен ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученным с помощью данного изобретения, определенным способом гельфильтрации с использованием Cellulofine GCL-300, в примере 19-(6); на фиг. 25 представлен ИК-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, который расщеплен ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученным с помощью данного изобретения; на фиг. 26 представлен 1H ЯМР-спектр сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, который расщеплен ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид,полученным с помощью данного изобретения; на фиг. 27 представлена зависимость между временем инкубации и количеством жизнеспособных в культуральной среде НСТ 116 клеток, к которой были добавлены препарат, содержащий сульфированный фукозусодержащий полисахарид, полученный в примере 1, смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, полученная в примере 1, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4, полученные в примере 6 сульфированные фукозусодержащие полисахариды, полученные в примере 9, и гепарин декстран сульфат. На фиг. 27 представлены зависимости между временем инкубации и количеством жизнеспособных клеток в культуральной среде WiDr клеток, к которой добавлены препарат сульфированного фукозусодержащего полисахарида, полученный в примере 1, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F,F-Fd-3 и F-Fd-4, полученные в примере 6 и сульфированные фукозусодержащие полисахариды, полученные в примере 9. Способ осуществления изобретения Далее данное изобретение будет описано более подробно. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды, подлежащие использованию в данном изобретении, особо не ограничиваются. Например, могут быть использованы полисахариды, имеющие происхождение из Fucus vesiculosus, Kjellmaniella crassifolia, Laminaria japonica, Undaria pinnatifida и других бурых водорослей (Phaeophyta). Известно, что голотурис (морской огурец) содержит сульфированные фукозусодержащие полисахариды в своей соматической стенке. Возможно, также в данном изобретении использовать сульфированные фукозусодержащие полисахариды, происходящие из морского огурца. Кроме того, в данном изобретении могут быть использованы продукты расщепления сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды можно расщеплять, например, при помощи химических способов расщепления, таких как обработка кислотой, физиче-3 005580 ских способов расщепления, таких как обработка ультразвуком, или при помощи способов ферментативного расщепления. Было установлено, что когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды и/или продукты их расщепления, описанные выше, добавляют к культуральной среде злокачественных клеток, злокачественные клетки претерпевают апоптоз в пределах от одного до нескольких дней после добавления. Было также подтверждено, что сульфированные фукозусодержащие полисахариды и/или продукты их расщепления не демонстрируют токсичность по отношению к нормальным клеткам. Используемый термин сульфированный фукозусодержащий полисахарид означает полисахарид,имеющий сульфированную фукозу в своей молекуле, без особого ограничения. Примеры его включают полисахариды, содержащиеся в бурых водорослях и морском огурце [Tatorui Kagaku, supervised byTokuro Soda, edited by Fujio Egami, Kyoritsu Shuppan K.K., Desember 15, 1955, р.319, р.321]. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды, происходящие из бурых водорослей, обычно называют фукоиданом, фукоидином и фуканом. Хотя известно, что существует несколько их молекулярных видов,такие сульфированные фукозусодержащие полисахариды в целом часто называют фукоиданом. Например, сообщается, что фукоидан, производимый Sigma Chemical Co., подразделяется на 13 молекулярных видов [Carbohydrate Research, 255, 213-224 (1994)], включая группу, содержащую фукозу как основной компонент, и другую группу, содержащую несколько процентов уроновой кислоты и имеющую высокое содержание фукозы и маннозы в качестве составляющих сахаридов. Сообщается, что такие сульфированные фукозусодержащие полисахариды имеют различные биологические активности, например, потенцирующую макрофаговую активность, ингибирующую канцерогенный метастаз и ингибирующую коагуляцию крови. Однако сульфированные фукозусодержащие полисахариды включают различные молекулярные виды и, поэтому необходимо разделить и очистить сульфированные фукозусодержащие полисахариды для того, чтобы выяснить, какая молекулярная разновидность действительно имеет определенную активность. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды включают полисахариды, которые, в основном, свободны от уроновой кислоты и содержат фукозу в качестве основного компонента составляющих сахаридов, и полисахариды, которые содержат несколько процентов уроновой кислоты и имеют высокое содержание фукозы и маннозы в качестве составляющих сахаридов. В дальнейшем,сульфированные фукозусодержащие полисахариды, в основном, свободные от уроновой кислоты, будут называть сульфированным фукозусодержащим полисахаридом-F, полисахариды, содержащие уроновую кислоту, будут называться сульфированным фукозусодержащим полисахаридом-U, и смесь данных сульфированных фукозусодержащих полисахаридов называют смесью сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Хотя способы для разделения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U известны, такие как фракционирование и разделение по молекулярной массе с использованием анионообменной смолы известны, при их использовании может быть достигнуто только недостаточное разделение, что затрудняет получение сульфированных фукозусодержащих полисахаридов в большом масштабе в качестве лекарственных средств или функциональной пищи (питания). Известно также, что окрашивающие вещества трудно полностью удалить из сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Коммерчески доступные продукты фукоидана и т.п. также загрязнены окрашивающими веществами. Обычно такие окрашивающие вещества, которые состоят из полифенольных полимеров, являются высокореакционноспособными и ингибируют различные ферментативные реакции или рост клеток. Кроме того, данные окрашивающие вещества иногда необратимо адсорбируются на полимерах (смолах) или контейнерах, сделанных из полимеров, будучи в контакте с ними. Таким образом, требуется устранить эти высокореакционноспособные окрашивающие вещества из сульфированных фукозусодержащих полисахаридов для того, чтобы тщательно изучить биологические активности сульфированных фукозусодержащих полисахаридов и предотвратить загрязнение контейнеров или полимеров. Известно, что когда смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов экстрагируют, например, из бурых водорослей или их остатка от промывки спиртом, загрязнение экстракта альгиновой кислотой можно ингибировать добавлением растворимого ацетата бария, хлорида бария, хлорида кальция или т.п., что облегчает последующую очистку. Однако добавление растворимой соли бария делает обработку отработанного раствора затруднительной. С другой стороны, хлорид кальция вызывает изменение значения рН когда он смешан с морскими водорослями, что делает необходимым регулирование рН для того, чтобы получить нерасщепляемые сульфированные фукозусодержащие полисахариды. На стадии регулирования значения рН иногда наблюдают, что морские водоросли становятся вязкими и агрегируют. В таком случае эффективность последующей экстракции понижается или разделение твердое вещество/жидкость, в частности, фильтрация, затрудняется. Хотя полезность сульфированных фукозусодержащих полисахаридов в данной области была ожидаемой, нет ни полезного товарного продукта сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F или сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U с достаточным фракционированием по молекулярному виду, ни сообщения о способе эффективного получения сульфированных фукозусодержащих-4 005580 полисахаридов. Кроме того, товарные сульфированные фукозусодержащие полисахариды содержат высокореакционноспособные окрашивающие вещества, описанные выше. Хотя сульфированные фукозусодержащие полисахариды имеют различные активности, до сих пор не получено ни существенно очищенного сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, ни сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U из-за трудности в их фракционном получении,как описано выше. Однако данное изобретение обеспечивает, в основном, очищенный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, подходящий способ его экстракции и способ получения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U. Данное изобретение, кроме того, обеспечивает сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, из которого удалены высокореакционноспособные окрашивающие вещества, трудно удаляемые из сульфированных фукозусодержащих полисахаридов в обычных, инигибирующих ферментативных реакциях, и загрязняющие полимеры и т.д. Данное изобретение, кроме того, обеспечивает, в основном, очищенный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, подходящий способ его экстракции и способ получения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F. Кроме того, данное изобретение обеспечивает сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F,из которого удалены высокореакционноспособные окрашивающие вещества, трудно удаляемые из сульфированных фукозусодержащих полисахаридов в обычных, ингибирующих ферментативных реакциях, и загрязняющие полимеры и т.д. В качестве сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, подлежащих использованию в данном изобретении, могут быть использованы вещества, содержащие сульфированный фукозусодержащий полисахарид, такие как бурые водоросли и морской огурец, которые, например, сушат, как таковые, и измельчают. Альтернативно, может быть использован экстракт, содержащий сульфированный фукозусодержащий полисахарид, получаемый из вещества, содержащего сульфированный фукозусодержащий полисахарид, либо как такового, либо в очищенном состоянии. Экстракт, содержащий сульфированный фукозусодержащий полисахарид, можно получить и очистить любым широко известным способом без ограничения. Продукты расщепления сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, подлежащие использованию в данном изобретении, представляют собой продукты, полученные путем расщепления сульфированных фукозусодержащих полисахаридов при помощи ферментативных, химических или физических способов, и могут быть использованы широко известные ферментативные, химические или физические способы. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты расщепления сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, подлежащие использованию в данном изобретении, включают их фармацевтически приемлемые соли. Примеры бурых водорослей, содержащих сульфированные фукозусодержащие полисахариды, из которых можно получить сульфированный фукозусодержащий полисахарид, включают бурые водоросли, описанные в Colored Illustrations of Marine Algae of Japan [foreword: Sachio Yamada, written by Sokichi Segawa, Hoikusha Publishing Co., Ltd, 22-52 (1977)], такие как Fucus vesiculosus, Kjellmaniella crassifolia, Laminaria japonica и Undaria pinnatifida. В качестве морского огурца, содержащего сульфированные фукозусодержащие полисахариды, из которого можно получить сульфированные фукозусодержащие полисахариды, можно использовать, например, те, которые описаны в выложенной Японской патентной заявке 91027/1992, такие как Stichopus japonicus и Holothuria Leucospilota. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид несет в своей молекуле сульфатные группы, которые взаимодействуют с различными основаниями, образуя при этом соли. Такие сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления становятся стабильными при превращении их в соли. Их обычно выделяют в форме натриевых и/или калиевых солей или т.п. Соли данных веществ могут быть превращены в свободные сульфированные фукозусодержащие полисахариды и свободные продукты их расщепления путем обработки катионообменной смолой, такой как Dowex 50W. Кроме того, данные соли могут быть подвергнуты реакциям солевого обмена обычным способом, превращая их при этом в различные требуемые соли, при необходимости. В качестве солей сульфированных фукозусодержащих полисахаридов и продуктов их расщепления можно использовать фармацевтически приемлемые соли, например, соли щелочных металлов, таких как калий и натрий, соли щелочно-земельных металлов, таких как кальций, магний и барий, соли органических оснований, такие как соли пиридиния иаммония. Порошок, содержащий сульфированные фукозусодержащие полисахариды, можно получить путем сушки бурых водорослей, морского огурца и т.п., содержащих сульфированные фукозусодержащие полисахариды, и последующего измельчения. Экстракт, содержащий сульфированные фукозусодержащие полисахариды, можно получить путем экстракции порошка, содержащего сульфированные фукозусодержащие полисахариды, горячей водой или разбавленной кислотой.-5 005580 Чтобы экстрагировать вещества, содержащие сульфированные фукозусодержащие полисахариды,температуру и время экстракции целесообразно выбирать в зависимости от цели (назначения), соответственно в диапазонах от 0 до 200 С и от 1 до 360 мин. Температуру и время экстракции обычно выбирают в диапазоне от 10 до 150 С, предпочтительно от 50 до 130 С и в диапазоне от 5 до 240 мин, предпочтительно от 10 до 180 мин соответственно. В качестве способа очистки экстракта с тем, чтобы повысить содержание сульфированного фукозусодержащего полисахарида, можно использовать, например, фракционирование сульфированных фукозусодержащих полисахаридов с использованием хлорида кальция, ацетата бария, и т.д.; фракционирование сульфированных фукозусодержащих полисахаридов с использованием кислого полисахаридного агглютинирующего (склеивающего) агента, такого как цетилпиридинийхлорид; фракционирование сульфированных фукозусодержащих полисахаридов с использованием кислого полисахаридного агглютинирующего (склеивающего) агента в присутствии солей; гель-фильтрацию; и ионообменную хроматографию. При необходимости, очистку можно выполнить, комбинируя указанные методики. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды можно подвергнуть расщеплению способами,широко известными для расщепления сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, например,используя фермент, расщепляющий сульфированный фукозусодержащий полисахарид, расщепление кислотой и обработку ультразвуком. Продукты расщепления можно очистить в соответствии со способами, описанными выше. Бурые водоросли обычно содержат ряд сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Бурые водоросли, подлежащие использованию в данном изобретении, особо не ограничиваются. Например,можно использовать бурые водоросли, такие как Fucus vesiculosus, Kjellmaniella crassifolia, Laminaria japonica, Undaria pinnatifida и другие бурые водоросли. Чтобы получить сульфированные фукозусодержащие полисахариды, бурые водоросли сначала экстрагируют водным растворителем. Морские водоросли, подлежащие экстрагированию, могут быть свежими водорослями. Однако целесообразно, чтобы до получения экстракта, бурые водоросли были высушены, превращены в порошок,промыты 60-100% спиртом или ацетоном или вымочены в водном растворе, содержащем формальдегид,ацетальдегид, глутаральдегид, аммиак или т.п., поскольку тем самым можно значительно снизить загрязнение сульфированных фукозусодержащих полисахаридов окрашивающими веществами. Когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды экстрагируют, например, из бурых водорослей или их остатка промывки спиртом, загрязнение экстракта альгиновой кислотой можно ингибировать добавлением растворимого ацетата бария, хлорида бария, хлорида кальция или т.п., что облегчает последующую очистку. По причине, описанной выше, предпочтительно экстрагировать сульфированные фукозусодержащие полисахариды 1 мМ - 1 М раствором ацетата кальция при температуре от 50 до 130 С. Когда водоросли толстые и порошок состоит из больших частиц, иногда наблюдают, что используя только раствор ацетата натрия при концентрации 0,2 М и выше, можно достичь лишь низкой эффективности экстракции. В таком случае рекомендуется сульфированные фукозусодержащие полисахариды сначала экстрагировать водой и затем к экстрагированному добавлять ацетат кальция с последующим удалением осажденной таким образом альгиновой кислоты. Когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды должны экстрагироваться вместе с альгиновой кислотой или когда следует получить частично расщепленные продукты на стадии экстракции,то растворитель и условия экстракции особо не ограничиваются. В таком случае можно использовать воду, водные растворы нейтральных солей, таких как хлорид натрия и хлорид магния, при различных концентрациях, кислые водные растворы, например, лимонной кислоты, фосфорной или хлористоводородной кислоты, при различных концентрациях, и щелочные водные растворы, например, гидроксида натрия и гидроксида калия, при различных концентрациях. Кроме того, туда могут быть добавлены буферы и консерванты. Также значение рН экстракта, температура экстракции и время экстракции особо не ограничены. Однако сульфированные фукозусодержащие полисахариды обычно малоустойчивы к кислотам и щелочам. Таким образом, имеется тенденция к легко протекаемому расщеплению, когда используют кислый или щелочной раствор. Произвольные продукты расщепления можно получить, контролируя температуру нагревания, время нагревания, значение рН и т.д. Например, среднюю молекулярную массу, молекулярно-массовое распределение и т.п. продуктов расщепления можно контролировать,осуществляя гель-фильтрацию, обработку мембраной для фракционирования по молекулярным массам и т.д. Другими словами, молекулярные массы и сахаридные композиции сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения варьируются в зависимости от времени сбора сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, используемого способа сушки, используемого способа хранения веществ и условий экстракции сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, таких как условия нагревания и значение рН. Например,сульфированные фукозусодержащие полисахариды гидролизуются кислотами. В щелочных условиях, с другой стороны, расщепление сульфированных фукозусодержащих полисахаридов протекает в результа-6 005580 те -элиминирования уроновой кислоты. Таким образом, молекулярные массы и молекулярно-массовые распределения описываемых сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, являются, каждый, одним лишь их примером. Молекулярная масса и молекулярно-массовое распределение можно легко варьировать, контролируя условия обработки сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Например, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F с приблизительно от 1000 до 10000 молекулярно-массовым распределением можно получить путем нагревания исходного вещества при 100 С в течение 1 ч в слабо щелочных условиях и использованием на стадии обессоливания молекулярно-ситовой мембраны с размером пор 300. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения с произвольной молекулярной массой и молекулярно-массовым распределением можно получить, подбирая надлежащим образом условия обработки. Альгиновая кислота и нейтральные сахариды могут быть удалены из указанного выше экстракта бурых водорослей, например, путем добавления кислого полисахаридного агглютинирующего (склеивающего) агента, такого как цетилпиридинийхлорид, в присутствии солей, таких как хлорид натрия, при концентрации от 0,2 до 0,6 М до тех пор, пока больше не образуется осадок, и затем собирая осадок. Если требуется, осадок промывают раствором солей, таким как 0,2-0,6 М хлорид натрия, и цетилпиридинийхлорид, содержавшийся в осадке, отмывают насыщенным спиртовым раствором хлорида натрия, получая смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Чтобы устранить окрашивающие вещества из полученной таким образом смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов,осадок можно растворить и затем обработать анионообменной смолой или полисахаридной смолой или подвергнуть ультрафильтрации. В том случае, когда осадок обессоливают и сушат вымораживанием,можно получить сухой препарат. Настоящими изобретателями было установлено, что сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения демонстрируют совершенно различное поведение по отношению к кислому полисахаридному агглютинирующему средству в присутствии одной или нескольких солей при концентрации 0,6-3 М. Например, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения может быть выделен из водного раствора смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, используя способ данного изобретения. Сначала одну или несколько солей добавляют к водному раствору смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов таким образом, чтобы получить общую концентрацию соли 0,6-2 М. В качестве солей, подлежащих добавлению, можно использовать, например, хлорид натрия и хлорид кальция без ограничения. Обычно, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения может быть отделен от сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения при концентрации соли приблизительно 1,5 М (см. фиг. 1, которая будет представлена ниже). Например, концентрацию указанной(ых) выше соли(ей) доводят до 1,5 М и затем добавляют кислый полисахаридный агглютинирующий агент, такой как цетилпиридинийхлорид, до тех пор, пока больше не образуется осадок. Таким образом, осаждают сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F. Путем удаления осадка, можно получить раствор сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения. Данный раствор концентрируют, при необходимости,и затем сульфированный фукозусодержащий полисахаридU, содержавшийся в нем, осаждают, добавляя туда, например, в 4 раза больше этанола. Затем цетилпиридинийхлорид в осадке отмывают насыщенным спиртовым раствором хлорида натрия, получая сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения. Полученный таким образом сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U может быть растворен и затем подвергнут ультрафильтрации, чтобы тем самым удалить из него окрашивающие вещества. Путем обессоливания и сушки вымораживанием сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, можно получить сухой препарат. Можно также добавлять консерванты и т.п. в ходе осуществления способа. Когда требуется эффективно получить только сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения, концентрация соли на стадии агглютинации, например, цетилпиридинийхлоридом,регулируют не до 0,2-0,6 М, а до, например, 2 М. Таким образом, полученный осадок содержит исключительно сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения. Изобретателями было установлено, что когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды очищают, используя анионообменную смолу в присутствии двухвалентного катиона, количество сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, адсорбированных на единицу поверхности смолы, можно увеличить и тем самым можно более эффективно разделить сульфированные фукозусодержащие полисахариды. Чтобы получить сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения,используя способ данного изобретения, к смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов добавляют химическое вещество, служащее источником двухвалентного катиона, при концентрации 1 мМ или более. Затем анионообменную смолу уравновешивают раствором, содержащим двухвалентный катион предпочтительно при концентрации 1 мМ или более, и при этом указанная выше смесь сульфирован-7 005580 ных фукозусодержащих полисахаридов адсорбируется. После тщательного промывания анионообменной смолы раствором, используемым для уравновешивания, сульфированные фукозусодержащие полисахариды проявляют при помощи элюирования с линейным градиентом, например, хлоридом натрия. В практике такого способа, можно добавлять двухвалентный катион так, чтобы получить концентрацию 1 мМ или более. В том случае, когда сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения должен адсорбироваться колонкой, концентрацию предпочтительно устанавливают менее чем 0,5 М. В качестве химического вещества, служащего источником двухвалентного катиона, подлежащего использованию в данном способе, соли кальция и соли бария проявляют особо превосходное действие. Однако данное изобретение не ограничивается ими, и могут использоваться сульфат магния, хлорид марганца и т.д. Когда получают смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов из бурых водорослей обычным способом, полученная смесь загрязнена высокореакционноспособными окрашивающими веществами, которые загрязняют смолы и полимерные контейнеры, находящиеся в контакте с ними, или ингибируют ферментативные реакции или рост клеток, как описано выше. Обнаружено, что такие окрашивающие вещества можно легко удалить посредством связывания или адсорбции полисахаридным веществом или веществом, несущим анионообменную группу. Другими словами, высокореакционноспособные окрашивающие вещества можно легко устранить путем добавления к раствору, содержащему сульфированные фукозусодержащие полисахариды, полисахаридных полимеров, таких как GCL-2000(производимый Selkagaku Kogyo), DEAE-Sepharose FF, DEAE-Sephadex A-50, QAE-Sephadex A-50,DEAE-Sephacel (каждый производимый Pharmacia), TSK-Gel DEAE-Toyopearl 650, TSK-Gel DEAEToyopearl 550 (каждый производимый Tosoh Corporation), Amberlite анионообменная смола (производимая Organo) и chitopearl анионообменная смола (производимая Fuji Spinning Co., Ltd.), перемешивания и затем удаления, или пропускания раствора, содержащего сульфированные фукозусодержащие полисахариды, через колонку, наполненную данными веществами. Однако анионообменная смола также связывается с сульфированными фукозусодержащими полисахаридами. Таким образом, предпочтительно контролировать концентрацию соли до приблизительно 2 М на стадии адсорбции окрашивающих веществ. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения может быть получен,например, способом, описанным в примере 2. Ниже будут проиллюстрированы физико-химические свойства указанного сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, хотя для данной цели сульфированным фукозусодержащим полисахаридом-U данного изобретения не ограничиваются. На фиг. 1 представлена степень осаждения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения, полученных в примере 4, при различных концентрациях хлорида натрия в присутствии избытка цетилпиридинийхлорида. На фиг. 1 ордината относится к степени осаждения (%), а абсцисса относится к концентрации (М) хлорида натрия. Сплошная линия и незаполненный круг обозначают степень осаждения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения при различных концентрациях хлорида натрия, в то время как пунктирная линия и незаполненный треугольник обозначают степень осаждения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения при различных концентрациях хлорида натрия (М). Степени осаждения определяют при температуре раствора 37 С следующим образом. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения, каждый, растворяют в воде и 4 М хлориде натрия при концентрации 2%. Затем растворы смешивают при различных соотношениях, тем самым, получая 125-мкл порции сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F растворов, имеющие различные концентрации хлорида натрия. Затем цетилпиридинийхлорид растворяют в воде и 4 М хлориде натрия при концентрации 2,5% и полученные растворы смешивают при различных соотношениях, получая 1,25% растворы цетилпиридинийхлорида с различными концентрациями хлорида натрия. Требуется в 3,2 раза больше по объему 1,25% раствора цетилпиридинийхлорида для полного осаждения сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, каждого, растворенного в воде при концентрации 2%. К 125-мкл порциям 2% растворов сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U и сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F с различными концентрациями хлорида натрия добавляют 400-мкл порции растворов цетилпиридинийхлорида с различными концентрациями хлорида натрия. После тщательного перемешивания и выдерживания при стоянии в течение 30 мин, каждую смесь центрифугируют и определяют содержание сахарида в супернатанте по фенол-сернокислотному методу [Analytical Chemistry, 28, 350(1956)], а затем рассчитывают степень осаждения каждого сульфированного фукозусодержащего полисахарида при каждой концентрации хлорида натрия.-8 005580 Молекулярную массу полученного таким образом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения измеряют методом гель-фильтрации с использованием Sephacryl S500. В результате, получают молекулярно-массовое распределение с максимумом приблизительно 190000 (фиг. 2). На фиг. 2 ордината относится к содержанию сахарида в образце, определенному фенолсернокислотным методом, выраженному как поглощение при 480 нм, а абсцисса относится к номеру фракции. Гель-фильтрацию осуществляют в следующих условиях: размер колонки: 3,08162,5 см; растворитель: 10 мМ натрий фосфатный буфер (рН 6,0), содержащий 0,2 М хлорида натрия и 10% этанола; скорость потока: 1,5 мл/мин; концентрация образца: 0,25%; объем образца: 20 мл и молекулярно-массовый стандарт: Shodex STANDARD P-82 (производитель Showa Denco, К.К.) Затем анализируют компоненты сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения, полученного таким образом. Сначала определяют содержание фукозы в соответствии со способом, описанным в Journal of Biological Chemistry, 175, 595 (1948). Затем полученный сухой препарат сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U растворяют в 1N хлористо-водородной кислоте, получая концентрацию 0,5%, и обрабатывают при 110 С в течение 2 ч, гидролизуя тем самым до составляющих моносахаридов. В дальнейшем, редуцированные (сокращенные, уменьшенные) концы моносахаридов, полученные гидролизом,подвергают пиридил-(2)-аминированию (РА), используя набор реагентов GlycoTAG и GlycoTAG. Используя набор реагентов Gly (каждый производимый Takara Shuzo Co., Ltd.) и соотношение составляющих моносахаридов в композиции, анализируют ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: PALPAK Тип А (4,6 мм 150 мм, производитель Takara Shuzo Со., Ltd.); элюент: 700 мМ смеси боратный буфер (рН 9,0):ацетонитрил=9:1; детектирование: флуорометрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 310 нм, длина волны флуоресценции: 380 нм; скорость потока: 0,3 мл/мин и температура колонки: 65 С Затем определяют содержание уроновой кислоты согласно методу, описанному в Analytical Biochemistry, 4, 330 (1962). Далее содержание серной кислоты определяют согласно методу, описанному в Biochemical Journal,84, 106 (1962). В результате установлено, что составляющими сахаридами полученного выше сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U являются фукоза, манноза, галактоза, глюкоза, рамноза, ксилоза и уроновая кислота, и никаких других нейтральных сахаридов, в основном, там не содержится. Соотношение основных компонентов в композиции, выраженное в молях, является следующим: фукоза:манноза:галактоза:уроновая кислота:сульфогруппа = приблизительно 10:7:4:5:20. Затем ИК-спектр кальциевой соли сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U получают на инфракрасном спектрометре с преобразованием Фурье типа JIR-DIAMOND 20 (производитель JEOLLtd.). Таким образом получен спектр, показанный на фиг. 3. На фиг. 3 ордината относится к пропусканию (%), а абсцисса относится к волновому числу (см-1). 1 Н ЯМР спектр кальциевой соли сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения получают на спектрометре ядерного магнитного резонанса модель JNM-500 (500 МГц; производитель JEOL Ltd.). Таким образом получен спектр, показанный на фиг. 4. На фиг. 4 по ординате отложена интенсивность сигнала, а по абсциссе отложен химический сдвиг(м.д.). Химические сдвиги в 1H ЯМР выражают, принимая химический сдвиг HOD, как 4,65 (м.д.). 1 Н ЯМР (D2O):5,27 (Н в 1-положении маннозы), 5,07 (Н в 1-положении фукозы), 4,49 (Н в 3 положении фукозы), 4,37 (Н в 1-положении глюкуроновой кислоты), 4,04 (Н в 4-положении фукозы),3,82 (Н во 2-положении фукозы), 3,54 (Н в 3-положении глюкуроновой кислоты), 3,28 (Н во 2-положении глюкуроновой кислоты), 1,09 (Н в СН 3 в 5-положении фукозы). При измерении на высокоскоростном, высокочувствительном поляриметре SEPA-300 (производитель Horiba Seisakusho), высушенный вымораживанием продукт сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения имеет удельное вращение -53,6. Настоящими изобретателями идентифицирована структура полученного таким способом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения следующим способом. Расщепление сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U расщепляющим ферментом,способным расщеплять сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, и очистка продукта расщепления.-9 005580 Очищенный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U обрабатывают эндофукоиданазой,как будет описано ниже, и продукты расщепления очищают. А именно, 16 мл 1% раствора сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, 12 мл 50 мМ фосфатного буфера (рН 8,0), 4 мл 4 М раствора хлорида натрия и 8 мл 32 мЕ/мл раствора эндофукоиданазы смешивают вместе и реакцию проводят при 25 С в течение 48 ч. Установлено, что поглощение реакционной смеси при 230 нм увеличивается по мере протекания реакции, тем самым подтверждая развитие расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данным ферментом. После обессоливания с помощью Micro Acilyzer G3 (производитель Asahi Chemical Industry Co., Ltd.), реакционную смесь разделяют на три фракции (а), (b) и (с) и очищают DEAE-Sepharose FF. Указанную выше эндофукоиданазу получают следующим способом. Штамм, подлежащий использованию при получении данного фермента, может быть произвольным штаммом, поскольку он способен продуцировать эндофукоиданазу. В качестве конкретного примера,можно указать Flavobacterium sp. SA-0082 (FERM BP-5402). Штамм, который был выделен из морской воды в Aomori, имеет следующие микологические свойства. 1. Штамм Flavobacterium sp. SA-0082 а. Морфологические свойства(1) Область температур роста: способен расти при 37 С или ниже, соответствующий диапазон температур роста составляет от 15 до 28 С(13) Потребность в солевой среде Рост в свободной от NaCl среде: Рост в 1% NaCl среде: Рост в среде морской воды: +(15) GC содержание во внутриклеточной ДНК: 32%(19) Скольжение: нет Полагают, что данный штамм является бактерией, аналогичной Flavobacterium aquatile и Flavobacterium meningosepticum, описанным Bergay's Manual of Systematic Bacteriology, 1, (1984) Bergay's Manual ofDeterminative Bacteriology, 9, (1994). Однако данный штамм отличается от первого по неспособности образовывать какую-либо кислоту путем метаболизма сахарозы, неспособен разлагать казеин, способен разлагать эскулин, способен переводить в жидкое состояние желатин и позитивен к уреазе, и от последнего по неспособности разлагать казеин и медленно расти при 37 С. Таким образом, данный штамм был идентифицирован как бактерия, принадлежащая к роду Flavobacterium и ее назвали Flavobacterium sp.-10 005580 Указанный выше штамм называют Flavobacterium sp. SA-0082 и он депонирован в National InstituteFERM ВР-5402 (причем перенос в международное депонирование запрошен 15 февраля 1996 г.). Питательные вещества, подлежащие добавлению в среду для инкубации данного штамма, могут быть произвольными питательными веществами, поскольку применяемый штамм может их утилизировать, продуцируя эндофукоиданазу. Соответствующие примеры источника углерода включают фукоидан, порошок морских водорослей, альгиновую кислоту, фукозу, глюкозу, маннит, глицерин, сахарозу,мальтозу, лактозу и крахмал, в то время как примеры источника азота включают дрожжевой экстракт,пептон, касамино (casamino) кислоты, экстракт замоченной кукурузы (corn steep liquor), мясной экстракт,обезжиренную сою, сульфат аммония и хлорид аммония. Кроме того, среда может содержать неорганические вещества и соли металлов, такие как соли натрия, фосфаты, соли калия, соли магния и соли цинка. Выход эндофукоиданазы, полученной инкубацией штамма, варьируется в зависимости от условий инкубации. В целом, предпочтительно, чтобы температура инкубации находилась в диапазоне от 15 до 30 С и значение рН среды находилось в диапазоне от 5 до 9. Выход эндофукоиданазы достигает максимума при инкубации штамма при аэрации и перемешивании в течение 5-72 ч. Как нечто само собой разумеющееся, условия инкубации соответственно выбирают в зависимости от применяемого штамма, состава среды и т.д. так, чтобы достичь максимальный выход. Эндофукоиданаза содержится как в клетках, так и в культуральном супернатанте. Указанную выше Flavobacterium sp. SA-0082 инкубируют в соответствующей среде и клетки собирают и разрушают способом, обычно используемым для разрушения клеток, таким как обработка ультразвуком. Таким образом можно получить экстракт, свободный от клеток. В дальнейшем, экстракт очищают с помощью процедуры очистки, обычно используемой в данной области, тем самым получая препарат очищенного фермента. Например, очистку можно осуществить путем обессоливания, ионнообменной хроматографией, колоночной хроматографией с носителем с гидрофобной связью, гель-фильтрацией или т.п., тем самым получая очищенную эндофукоиданазу, свободную от любой другой фукоиданазы. Культуральный супернатант, полученный удалением клеток из указанной выше культуральной среды, также содержит большое количество фермента (внеклеточный фермент), который можно очистить такими же способами, как способы, применяемые для очистки внутриклеточного фермента. Далее будет приведен пример очистки эндофукоиданазы.Flavobacterium sp. SA-0082 (FERM ВР-5402) инокулируют в 600 мл среды, включающей искусственную морскую воду (рН 7,5, производитель Jamarin Laboratory), содержащую 0,25% глюкозы, 1,0% пептона и 0,05% дрожжевого экстракта, которую пипетируют в 2-литровую колбу Эрленмейера и стерилизуют при 120 С в течение 20 мин. Затем штамм инкубируют в нем при 24 С в течение 24 ч, тем самым получая семенную культуру. В 30-литровый сосуд-ферментер загружают 20 л среды, включающей искусственную морскую воду (рН 7,5, производитель Jamarin Laboratory), содержащую 0,25% глюкозы,1,0% пептона, 0,05% дрожжевого экстракта и 0,01% противовспенивающего агента (КМ 70 производитель Shin-Etsu Chemical Co., Ltd.) и стерилизуют при 120 С в течение 20 мин. После охлаждения среду инокулируют 600 мл указанной выше семенной культуры, которую затем инкубируют в ней при 24 С в течение 24 ч в условиях аэрации при скорости 10 л/мин и перемешивании при 125 об./мин. После завершения инкубации, культуральную среду центрифугируют, тем самым собирая клетки. Клетки суспендируют в 20 мМ ацетат-фосфатного буфера (рН 7,5), содержащего 200 мМ хлорида натрия, разрушают обработкой ультразвуком и центрифугируют, получая экстракт клеток. Эндофукоиданаза в данном клеточном экстракте показывает активность 5 мЕ/мл среды. К экстракту добавляют сульфат аммония так, чтобы в конце концов установить 90% насыщение. После растворения при перемешивании, смесь центрифугируют и осадок суспендируют в таком же буфере, как указанный выше буфер, в котором суспендировали клетки. Затем суспензию тщательно диализуют против 20 мМ ацетат-фосфатного буфера (рН 7,5), содержащего 50 мМ хлорида натрия. После удаления образовавшегося при диализе осадка центрифугированием, его адсорбируют DEAE-Sepharose FF колонкой, которую уравновешивают 20 мМ ацетат-фосфатным буфером (рН 7,5), содержащим 50 мМ хлорида натрия. Затем адсорбированное вещество хорошо промывают тем же самым буфером и проявляют элюированием линейным градиентом хлорида натрия от 50 до 600 мМ. Активные фракции объединяют и туда добавляют хлорид натрия, получая конечную концентрацию 4 М. Затем его адсорбируютPhenyl Sepharose CL-4B колонкой, которую уравновешивают 20 мМ ацетат-фосфатным буфером (рН 8,0),содержащим 4 М хлорида натрия. Затем адсорбированное вещество хорошо промывают тем же самым буфером и выделяют элюированием линейным градиентом хлорида натрия от 4 до 1 М. Активные фракции объединяют и концентрируют при помощи ультрафильтра. Затем подвергают гель-фильтрации с использованием Sephacryl S-300, уравновешанной 10 мМ фосфатным буфером, содержащим 50 мМ хлорида натрия. Активные фракции объединяют. Молекулярная масса фермента, определенная из времени-11 005580 удерживания в Sephacryl S-300, составляет около 460000. Затем активную фракцию диализуют против 10 мМ фосфатного буфера (рН 7), содержащего 250 мМ хлорида натрия. Раствор фермента адсорбируютMono Q HR5/5 колонкой, которую уравновешивают 10 мМ фосфатным буфером (рН 7), содержащим 250 мМ хлорида натрия. Адсорбированное вещество хорошо промывают тем же самым буфером и выделяют элюированием линейным градиентом хлорида натрия от 250 мМ до 450 мМ. Активные фракции объединяют, получая очищенный фермент. В табл. 1 суммированы результаты указанных выше стадий очистки. Таблица 1 Активность данного фермента определяют следующим образом. 50 мкл 2,5% раствора фукоидана,происходящего от Kjellmaniella crassifolia, 10 мкл данного фермента и 60 мкл 83 мМ фосфатного буфера(рН 7,5), содержащего 667 мМ хлорида натрия, смешивают вместе и реакцию проводят при 37 С в течение 3 ч. Затем 105 мкл реакционной смеси смешивают с 2 мл воды при перемешивании и измеряют поглощение (AT) при 230 нм. В качестве контролей, используют реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но замещая фермент только указанным выше буфером, используемым для растворения фермента, и другую реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но замещая раствор фукоидана только водой, и также измеряют их поглощения (АВ 1 и АВ 2). Количество фермента, с помощью которого 1 мкмоль гликозидных связей между маннозой и уроновой кислотой может быть эксклюзивно расщеплено в 1 мин, принимают за одну Е. Расщепленные таким образом связи определяют, считая миллимолярный молекулярный коэффициент экстинкции ненасыщенной уроновой кислоты, получаемой в реакции элиминирования, как 5,5. Активность фермента определяют в соответствии со следующим уравнением: Активность (Е/мл)=(AT-АВ 1-АВ 2)2,105120/(5,51050,01180); 2,105: объем (мл) образца, поглощение которого подлежит измерению; 120: объем (мкл) реакционной смеси с ферментом; 5,5: миллимолярный молекулярный коэффициент экстинкции (мМ) ненасыщенной уроновой кислоты при 230 нм; 105: объем (мкл) реакционной смеси, используемой для разбавления; 0,01: объем (мл) фермента; и 180: время реакции (мин). Белок определяют, измеряя поглощение раствора фермента при 280 нм, и рассчитывают, принимая поглощение 1 мг/мл раствора белка, равным 1,0. Фукоидан, происходящий от Kjellmaniella crassifolia, применяемый в качестве субстрата, получают следующим способом. Сухую Kjellmaniella crassifolia размалывают при помощи свободной мельницы (free mill) (производитель Nara Kikai Seisakusho) и обрабатывают 10 объемами 85% метанола при 70 С в течение 2 ч. Затем фильтруют и остаток затем обрабатывают 10 объемами метанола при 70 С в течение 2 ч. После фильтрования, к остатку добавляют 20 объемов воды. Затем смесь обрабатывают при 100 С в течение 3 ч и фильтруют, получая экстракт. Концентрацию соли экстракта доводят до уровня концентрации 400 мМ раствора хлорида натрия. Затем туда добавляют цетилпиридинийхлорид до тех пор, пока не перестанет образовываться осадок. После центрифугирования осадок тщательно промывают этанолом, тем самым полностью удаляя цетилпиридинийхлорид. Затем его подвергают обессоливанию и удалению низкомолекулярных веществ, используя ультрафильтр (исключение молекулярной массы ультрафильтрационной мембраной: 100000, производитель Amicon). Полученный таким образом осадок удаляют с помощью центрифугирования. Супернатант сушат вымораживанием, получая очищенный Kjellmaniella crassifolia фукоидан. Анализ структуры продукта реакции-фермента. Указанная выше эндофукоиданаза представляет собой фермент, который эксклюзивно расщепляет 14 связь между D-маннозой и D-глюкуроновой кислотой в сульфированном фукозусодержащем полисахариде-U. Когда полученный выше сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U обрабатывают данным ферментом, образуются олигосахариды, имеющие структуры, представленные следующими формулами (I), (II) и (III): Ниже будет представлено детальное описание. Порция каждой из трех указанных выше трех фракций (а), (b) и (с), отделенной и очищенной с помощью DEAE-Sepharose FF, является пиридил-(2)-аминированной (РА) по редуцированному концу при использовании набора реагентов GlycoTAG и GlycoTAG, используя набор реагентов Gly с получением РА сахаридов (РА-а), (РА-b) и (РА-с), которые затем анализируют с помощью ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях:(i) ВЭЖХ анализ с использованием колонки для молекулярно-массового фракционирования: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонки: SHODEX SB-803 (4,6 мм 250 мм, производитель Showa Denco, К.К.); элюент: 0,2 М хлорид натрия: диметилсульфоксид=9:1; детектирование: флуорометрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 320 нм, длина волны флуоресценции: 400 нм; скорость потока: 1 мл/мин и температура колонки: 50 С-13 005580 температура колонки: 40 С. На фиг. 5, 6 и 7 соответственно показаны ВЭЖХ картины элюирования пиридил-(2)-аминированных сахаридных соединений (РА-а), (РА-b) и (РА-с). На каждой фигуре ордината относится к относительной интенсивности флуоресценции, а абсцисса относится к времени удерживания (мин). Ниже иллюстрируются физические свойства соединений (а), (b) и (с), т.е. соединений, представленных формулами (I), (II) и (III). На фиг. 8, 9 и 10 соответственно показаны масс-спектры соединений (а), (b) и (с), а на фиг. 11, 12 и 13 соответственно показаны масс-масс-спектры соединений (а), (b) и (с). На каждой фигуре ордината относится к относительной интенсивности (%), а абсцисса относится к значению m/z. Кроме того, на фиг. 14, 15 и 16 соответственно показаны 1H ЯМР-спектры соединений (а), (b) и (с). На каждой фигуре ордината относится к интенсивности сигнала, абсцисса относится к химическому сдвигу (м.д.). Химические сдвиги в 1H ЯМР выражают, принимая химический сдвиг HOD равным 4,65 (м.д.). Физические свойства соединения (а): Молекулярная масса: 564D-глюкуроновая кислота-H+]-, 225 [L-фукоза сульфат-Н 2 О-Н+]-, 243 [L-фукоза сульфат-Н+]-, 319 [ненасыщенная D-глюкуроновая кислота, связанная с D-мaннoзoй-H2O-H+]-, 405 [М-ненасыщенная Dглюкуроновая кислота-Н+]-, 483 [M-SO3-H+]-. 1 ЯМР (D2O): В описании приняты следующие сокращения для ЯМР данных: д - дублет, дд - двойной дублет, ссинглет, шир.с - широкий синглет, м - мультиплет, т - триплет, шир.т - широкий триплет, кв. - квартет. 1 ЯМР (D2 О): 5,78 (1 Н, д, J=3,7 Гц, 4"-Н), 5,26 (1 Н, d, J=1,2 Гц, 1-H), 5,12 (1 Н, д, J=4,0 Гц, 1'-Н), 5,03 Физические свойства соединения (b): Молекулярная масса: 724 Физические свойства соединения (с): Молекулярная масса: 1128(две молекулы L-фукозы, две молекулы D-маннозы, одна молекула ненасыщенной D-глюкуроновой кислоты и одна молекула D-глюкуроновой кислоты). Сульфат: две молекулы (в 3-положении каждой L-фукозы). Пики 1H-ЯМР приписаны, соответственно, положениям, обозначенным цифрами в следующей формуле (VI): Когда полученный таким образом сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U обрабатывают указанной выше эндофукоиданазой, по мере протекания реакции происходит элиминирование и-15 005580 таким образом поглощение при 230 нм увеличивается. Все основные продукты реакции несут ненасыщенные гексуронатные группы, что подтверждает, что полученный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U имеет сахарную цепь, состоящую из гексуроновой кислоты и маннозы, альтернативно связанных одна с другой. Поскольку фукоза содержится в качестве основного составляющего сахарида,полученный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U склонен к расщепления кислотами, по сравнению с обычными полисахаридами. С другой стороны, известно, что связи гексуроновых кислот и маннозы относительно высоко устойчивы к кислотам. Были сделаны попытки идентифицировать гексуроновую кислоту в сахарной цепи, которая состоит из гексуроновой кислоты и маннозы, альтернативно связанных одна с другой, и содержится в смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов,происходящей из Kjellmaniella crassifolia, нижеследующим способом со ссылкой на способ, описанный вCarbohydrate Research, 125, 283-290 (1984). Сначала сульфированную фукозусодержащую полисахаридную смесь растворяют в 0,3 М щавелевой кислоте и обрабатывают при 100 С в течение 3 ч. Затем ее подвергают фракционированию по молекулярным массам и фракции с молекулярной массой 3000 или более объединяют. Затем ее подвергают дальней обработке анионо-обменной смолой и адсорбированные вещества собирают. Полученное таким образом вещество сушат вымораживанием и гидролизуют 4N хлористо-водородной кислотой. После доведения значения рН до 8 его подвергают пиридил-(2)аминированию и уроновую кислоту анализируют методом ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: PALPAK Тип N (4,6 мм 250 мм, производитель Takara Shuzo Co., Ltd.); элюент: 200 мМ уксусная кислота-триэтиламиновый буфер (рН 7,3):ацетонитрил = 25:75 детектирование: Флуорометрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 320 нм, длина волны флуоресценции: 400 нм; скорость потока: 0,8 мл/мин и температура колонки: 40 С. В качестве стандартов для РА гексуроновых кислот, используют стандарты, полученные пиридил(2)-аминированием глюкуроновой кислоты, производимой Sigma Chemical Co., галактуроновой кислоты,производимой Wako Pure Chemical Industries, Ltd., индуроновой кислоты, полученной гидролизом 4 метилумбеллиферилL-идуронида, производимого Sigma Chemical Co., и маннуроновой кислоты и гулуроновой кислоты, полученной гидролизом альгиновой кислоты (производимой Wako Pure ChemicalIndustries, Ltd.), с последующим разделением, используя анионообменную смолу, со ссылкой на способ,описанный в Acta Chemical Scandinavica, 15, 1397-1398 (1961). В результате, установлено, что глюкуроновая кислота только одна содержится в виде гексуроновой кислоты в сахарной цепи в указанной выше смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов. Затем глюкуроновую кислоту в гидролизате указанной выше сахарной цепи отделяют от Dманнозы, используя анионообменную смолу, и сушат вымораживанием. Затем измеряют удельное вращение. Таким образом установлено, что глюкуроновая кислота представляет декстровращающую глюкуроновую кислоту, т.е. D-глюкуроновую кислоту. Затем сульфированную фукозусодержащую полисахаридную смесь, происходящую от Kjellmaniellacrassifolia, обрабатывают указанной выше эндофукоиданазой и затем гидролизуют, используя щавелевую кислоту, аналогично случаю, приведенному выше. Однако никакого полимера, имеющего Dглюкуроновую кислоту и D-маннозу, альтернативно связанных одна с другой, не обнаружено. На основе данных результатов, устанавливают, что указанная выше эндофукоиданаза расщепляет путем реакции элиминирования сульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие структуру скелета, состоящего из D-глюкуроновой кислоты и D-маннозы, альтернативно связанных одна с другой. Затем полимер, полученный расщеплением с помощью щавелевой кислоты, подвергают ЯМР анализу, тем самым изучая аномерную конфигурацию мест связывания D-глюкуроновой кислоты и Dманнозы и гликозидную связь. Данные ЯМР-анализа полимера являются следующими. Химические сдвиги в 1H ЯМР выражают, принимая химический сдвиг метильной группы в триэтиламине равным 1,13 (м.д.), а химические сдвиги в 13 С ЯМР выражают, принимая химический сдвиг метильной группы в триэтиламине равным 9,32 м.д. 1 ЯМР (D2O):5,25 (1H, шир.с, 1-Н), 4,32 (1H, д, J=7,6 Гц, 1-Н), 4,00 (1H, шир.с, 2-Н), 3,71 (1H, м,5'-Н), 3,69 (Н из 1H, м, 5-СН), 3,68 (1H, м, 3-Н), 3,63 (Н из 1H, м, 5-СН), 3,63 (1H, м, 4'-Н), 3,57 (1 Н, м, 4 Н), 3,54 (1H, м, 3'-Н), 3,53 (1H, м, 5-Н), 3,25 (1H, т, J=8,5 Гц, 2'-Н). 13 С ЯМР (D2O):175,3 (С из 5'-СООН), 102,5 (1'-С), 99,6 (1-С), 78,5 (2-С), 77,9 (4'-С), 77,0 (3'-С),76,7 (5'-С), 73,9 (5-С), 73,7 (2'-С), 70,6 (3-0), 67,4 (4-С), 61,0 (С из 5-СН 2OН). Данные пики приписывают, соответственно, положениям, обозначенным цифрами в следующей формуле (VII): Что касается конфигурации в 1-положении D-глюкуроновой кислоты, то ее идентифицируют как D-глюкуроновую кислоту, по ее вицинальной константе связывания 7,6 Гц. Что касается конфигурации в 1-положении D-маннозы, то ее идентифицируют как -D-маннозу, по ее химическому сдвигу 5,25 м.д. Способы связывания составляющих сахаридов анализируют методом НМВС, т.е. методом определения 1H-гетероядерной связи. DQF-COSY и НОНАНА методы применяют при отнесении в 1H ЯМР, в то время как HSQC метод применяют при отнесении в 13 С ЯМР. В НМВС спектре взаимодействующие пики наблюдают между 1-Н и 4'-С с между 4'-Н и 1-С, и между 1-Н и 2-С с между 2-Н и 1-С. Данные факты указывают на то, что D-глюкоза связана во 2 положении D-маннозы через -связь, в то время как D-манноза связана в 4-положении D-глюкуроновой кислоты через -связь. Принимая во внимание приведенные выше результаты, обнаружено, что соединение (а) имеет структуру, где ненасыщенная D-глюкуроновая кислота и L-фукоза, имеющая связанную с ней сульфогруппу, связаны с D-маннозой, которая имеет редуцированный конец; соединение (b) имеет структуру,где ненасыщенная D-глюкуроновая кислота и L-фукоза, имеющая две связанные с ней сульфогруппы,связаны с D-маннозой, которая имеет редуцированный конец и имеет сульфогруппу, связанную с ней; и соединение (с) имеет структуру, где D-глюкуроновая кислота и L-фукоза, имеющая связанную с ней сульфогруппу, связаны с D-маннозой, которая имеет редуцированный конец, и с данной D-глюкуроновой кислотой связана D-манноза и, в свою очередь, с данной ненасыщенной D-маннозой дополнительно связаны ненасыщенная D-глюкуроновая кислота и L-фукоза, имеющая сульфогруппу, связанную с ней. Как обсуждено выше, полученный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U имеет структуру, где D-глюкуроновая кислота и D-манноза альтернативно связаны одна с другой, и L-фукоза связана, по крайней мере, с одной D-маннозой. Кроме того, он имеет частичную (фрагмент) структуру, представленную следующей общей формулой (VIII), где по крайней мере одна из спиртовых гидроксильных групп сульфирована и n равно целому числу 1 или более: Данное изобретение обеспечивает сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, который был отделен от сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения и очищен. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения содержит уроновую кислоту в виде его составляющего сахарида и расщепляется фукоиданазой, продуцируемой Flavobacterium sp. SA0082 (FERM BP-5402), с получением по крайней мере одного соединения, выбранного из соединений,представленных указанными выше формулами (I), (II) и (III). Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения не ограничен молекулярной массой, молекулярно-массовым распределением или сахаридной композицией. А именно, можно получить сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, имеющий произвольную молекулярную массу и молекулярно-массовое распределение, и можно получить сульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие определенным образом прогнозируемые физико-химические свойства. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения не имеет такого сильного антикоагулянтного действия, как действие, показанное сульфированным фукозусодержащим полисахаридом-F. Таким образом, могут быть разработаны сульфированные фукозусодержащие полисахариды, в основном, не проявляющие антикоагулянтную активность. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения может использоваться в виде очищенных сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, в противораковых средствах, антиметастатических средствах, канцеростатических агентах и т.п. Кроме того, он полезен в качестве антигена против антисульфированного фу-17 005580 козусодержащего полисахаридного антитела. Кроме того, можно получить олигосахариды, такие как олигосахариды, имеющие структуры указанных выше формул (I), (II) и (III), из сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U. А именно, его используют для получения таких новых соединений. Ниже описывается сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения и способ его получения. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения можно получить, используя способ данного изобретения следующим образом. Смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов обрабатывают расщепляющим ферментом, способным расщеплять сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U. После завершения ферментативной реакции, расщепленный таким образом сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U удаляют ультрафильтрацией и т.д. В качестве указанного выше расщепляющего фермента можно использовать любой фермент, который может селективно расщеплять сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U. В качестве его конкретного примера, можно указать указанную выше эндофукоиданазу, продуцируемую Flavobacterium sp. SA-0082(FERM BP-5402). При обработке данным ферментом, концентрация субстрата, температура, значение рН и т.д. могут быть подобраны, соответственно, так, чтобы обеспечить преимущественно протекание ферментативной реакции. Обычно желательно, чтобы концентрация субстрата варьировалась в диапазоне от приблизительно 0,1 до 10%, температура варьировалась от приблизительно 20 до 40 С и значение рН варьировалось от приблизительно 6 до 9. Можно также микроорганизм, способный продуцировать расщепляющий фермент, имеющий способность расщеплять сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U, подвергнуть инкубации в среде, в которую добавлена смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, и затем сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F подвергнуть очистке из данной среды. Микроорганизм,подлежащий использованию, может быть произвольным микроорганизмом, который способен продуцировать расщепляющий фермент, имеющий способность расщеплять сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U. В качестве конкретного примера, можно указать микроорганизм Flavobacterium sp. SA0082 (FERM BP-5402), описанный выше, и Fucoidanobacter marinus SI-0098 (FERM-5403). Питательные вещества, подлежащие добавлению в среду, могут быть произвольными, поскольку используемый штамм может утилизовать их для того, чтобы продуцировать расщепляющий фермент. Соответствующие примеры источника углерода включают фукоидан, порошок морских водорослей, альгиновую кислоту, фукозу, глюкозу, маннит, глицерин, сахарозу, мальтозу, лактозу и крахмал, в то время как примеры источника азота включают дрожжевой экстракт, пептон, касамино кислоты, экстракт замоченной кукурузы, мясной экстракт, обезжиренную сою, сульфат аммония и хлорид аммония. Среда может дополнительно содержать неорганические вещества и соли металла, такие как соли натрия, фосфаты,соли калия, соли магния и соли цинка. Не говоря уже о том, что условия инкубации следует подбирать в зависимости от используемого штамма, состава среды, и т.д. так, чтобы достичь максимального уровня активности расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U. Вообще говоря, инкубацию можно осуществлять при температуре от 15 до 30 С и при рН среды от 5 до 9 в условиях аэрации/перемешивании в течение от 5 до 72 ч. После завершения инкубации, компоненты в среде, другие чем сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, а именно, таким образом расщепленный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U и т.д., могут быть удалены, например, ультрафильтрацией. Штамм Fucoidanobacter marinus SI-0098, который был выделен из морской воды Aomori, имеет следующие микологические свойства. 1. Штамм Fucoidanobacter marinus SI-0098(1) Область температур роста: способен расти при 37 С, соответствующий диапазон температур роста в пределах от 15 до 28 С(12) Потребность в солевой среде Рост в свободной от NaCl среде: Рост в 1% NaCl среде: Рост в среде морской воды: +(14) GC содержание во внутриклеточной ДНК: 61%(19) Цвет колонии: нет образования характерного пигмента колонии(22) Жгутик: полярный монотрихат Согласно классификации, описанной в Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 9 (1994), данный штамм попадает в группу 4 (Грамотрицательные аэробные бациллы и кокки). Однако данный штамм значительно отличается от бактерий, относящихся к группе 4, по имеющемуся менахинону 7 в электронной транспортной цепи и содержанию 61% GC. В основном, грамотрицательные бактерии имеют убихинон в электронной транспортной цепи, в то время как грамположительные бактерии имеют менахинон. Хотя грамотрицательные бактерии, относящиеся к родам Flavobacterium и Cytophaga, имеют исключительно менахинон в электронной транспортной цепи, они сильно отличаются по GC содержанию от указанного выше штамма, такого как Cytophaga arvensicola, который является почвенной бактерией и содержит от 43 до 46% GC, и Cytophaga diffluens, С. fermentans, С. marina и С. uliginosa, которые являются морскими бактериями, каждая из которых содержит 42% GC. Когда данный штамм сравнивают по гомологии в 163 рДНК последовательности со штаммами, которые были идентифицированы, то даже наиболее гомологичный штамм (Verrucomicrobium spinosum) показывает гомологию 76,6%. Широко известно, что две бактерии с гомологией 90% или менее одна от другой отличаются по роду. Таким образом, изобретатели пришли к выводу, что данный штамм представляет новую бактерию, не принадлежащую ни к одному из существующих родов, и его назвали Fucoidanobacter marinus SI-0098. Указанный выше штамм называют Fucoidanobacter marinus SI-0098 и он депонирован в National Institute of Bioscience and Human-Technology, Agency of Industrial Science and Technology (1-3, Higashi Ichome, Tsukuba-shi, Ibaraki-ken 305, JAPAN) под номером в каталоге FERM P-14873 с 29 марта 1995 г. и депонирован в National Institute of Bioscience and Human-Technology, как описано выше, под номером в каталоге FERM ВР-5403 (причем перенос в международное депонирование запрошен 15 февраля 1996 г.). Как описано выше, было установлено, что сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F и сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U данного изобретения демонстрируют совершенно различные друг от друга поведения по отношению к полисахаридному агглютинирующему агенту в присутствии одной или более солей при концентрации от 0,6 до 3 М. Например, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения может быть выделен из водного раствора смесей сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, используя способ данного изобретения. Сначала одну или более солей добавляют к водному раствору смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов таким образом, чтобы получить суммарную концентрацию соли от 0,6 до 3 М. В качестве солей, подлежащих добавлению, можно использовать, например, хлорид натрия и хлорид кальция без ограничения. После доведения концентрации соли, кислый полисахаридный коагулирующий агент, такой как цетилпиридинийхлорид, добавляют до тех пор, пока осадок больше не будет образовываться. Затем осадки собирают, получая сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения. Однако следует обратить внимание на точку, где сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F может с трудом образовывать какой-либо осадок в случае цетилпиридинийхлорида, когда концентрация указанной выше соли превышает 2 М. Обычно, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения можно отделить от сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U при концентрации соли приблизительно 1,5 М (см. фиг. 1). После промывания осадка, при необходимости, цетилпиридинийхлорид в осадке вымывают с помощью смеси хлорид натрия-насыщенный спирт, получая сульфированный фукозусодержащий-19 005580 полисахарид-F данного изобретения. Осадок можно растворить и подвергнуть ультрафильтрации, чтобы удалить окрашивающие вещества из полученного таким образом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения. Возможно также обессоливание и сушка вымораживанием осадка с получением сухого препарата. Кроме того, в процессе можно добавить консервант или т.п. Настоящими изобретателями также обнаружено, что когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды очищают, используя анионообменную смолу, как описано выше, сосуществование двухвалентного катиона вызывает количественное увеличение сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, адсорбированных на единицу поверхности смолы, и таким образом сульфированные фукозусодержащие полисахариды можно выделить более эффективно. Чтобы получить сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения, используя способ данного изобретения, к смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов добавляют химическое вещество, служащее в качестве источника двухвалентного катиона, предпочтительно при концентрации 1 мМ или более. Затем анионообменную смолу уравновешивают раствором, содержащим двухвалентный катион предпочтительно при концентрации 1 мМ или более, и при этом указанная выше смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов адсорбируется. После тщательного промывания анионообменной смолы используемым раствором при уравновешивании сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F выделяют при помощи элюирования линейным градиентом, например, хлорида натрия. В практике данного способа,двухвалентный катион может быть добавлен так, чтобы получить концентрацию 1 мМ или больше. В качестве химического вещества, выполняющего роль источника двухвалентного катиона, подлежащего использованию в данном способе, соли кальция и соли бария демонстрируют особо превосходные действия. Однако данное изобретение не ограничивается данными веществами и могут быть также использованы сульфат магния, хлорид марганца и т.д. Сульфированный фукозусодержащий полилисахарид-F данного изобретения можно получить, например, способом, описанным в примере 4. Ниже будут проиллюстрированы физико-химические свойства данного сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, хотя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения не ограничивается им. Молекулярная масса полученного таким образом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F определяют с помощью метода гель-фильтрации с использованием Sepharyl S-500. В результате этого, он показывает молекулярно-массовое распределение вблизи приблизительно 190000(фиг. 17). На фиг. 17 ордината относится к содержанию сахарида в образце, определенному по фенолсернокислотному способу, и выраженному как поглощение при 480 нм, в то время как абсцисса соответствует номеру фракции. Гель-фильтрацию осуществляют в следующих условиях: размер колонки: 3,08162,5 см; растворитель: 10 мМ натрий фосфатный буффер (рН 6,0), содержащий 0,2 М хлорида натрия и 10% этанола; скорость потока: 1,5 мл/мин; концентрация образца: 0,25%; объем образца: 20 мл; стандарт молекулярной массы: Shodex STANDARD P-82 (производимый Showa Denko, К.К.). Затем анализируют компоненты полученного таким образом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения. Сначала, содержание фукозы определяют в соответствии со способом, описанным в Journal of Biological Chemistry, 175, 595 (1948). Затем сухой препарат полученного таким образом сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F растворяют в 1N хлористо-водородной кислоте, получая концентрацию 0,5%, и обрабатывают при 110 С в течение 2 ч, гидролизуя тем самым его на составляющие моносахариды. В дальнейшем, редуцированные концы моносахаридов, полученных гидролизом, подвергают пиридил-(2)аминированию (ПА), используя набор реагентов GlycoTAG и GlycoTAG, и соотношение составляющих моносахаридов в композиции анализируют при помощи ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: PALPAK Тип А (4,6 мм 150 мм); элюент: 700 мМ боратный буфер (рН 9,0):ацетонитрил = 9:1; детектирование: флуореметрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 310 нм, длина волны флуоресценции: 380 нм; скорость протока: 0,3 мл/мин и температура колонки: 65 С Затем содержание уроновой кислоты определяют согласно методу, описанному в Analytical Biochemistry, 4, 330 (1962). В дальнейшем содержание серной кислоты определяют в соответствии с методом, описанным в-20 005580 В результате установлено, что составляющими сахаридами полученного выше сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F являются фукоза и галактоза при молярном отношении приблизительно 10:1. Ни уроновая кислота, ни какие-либо другие нейтральные сахариды, в основном, в нем не содержатся. Молярное отношение фукозы к сульфату составляет приблизительно 1:2. Затем 16 мл 1% раствора фукоидана-F, 12 мл 50 мМ фосфатного буфера (рН 8,0), 4 мл 4 М хлорида натрия и 8 мл 32 мЕ/мл раствора указанной выше эндофукоиданазы, происходящей от Flavobacterium sp.SA-0082 (FERM BP-5402), смешивают вместе и подвергают взаимодействию при 25 С в течение 48 ч. В результате, продукт расщепления не образуется и субстрат не расщепляет. ИК-спектр кальциевой соли сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F получают на инфракрасном спектрометре с Фурье преобразованием типа JIR-DIAMOND 20 (производитель JEOLLtd.). Так получен спектр, показанный на фиг. 18. На фиг. 18 ордината соответствует пропусканию (%), а абсцисса соответствует волновому числу (см-1). 1H ЯМР спектр натриевой соли сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения получают на спектрометре ядерного магнитного резонанса Модель JNM-500 (500 МГц; производитель JEOL Ltd.). Так получен спектр, показанный на фиг. 19. На фиг. 19 по ординате отложена интенсивность сигнала, а по абсциссе отложен химический сдвиг(м.д.). Химические сдвиги в 1H ЯМР выражают, используя в качестве эталона химический сдвиг HOD,равный 4,65 м.д. 1H ЯМР (D2O):5,30 (Н в 1-положении фукозы), 1,19 (Н в СН 3 при 5-положении фукозы). При измерении на высокоскоростном, высокочувствительном поляриметре SEDA-300 (производитель Horiba Seisakusho), высушенный вымораживанием продукт сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F имеет удельное вращение -135. Данное изобретение обеспечивает сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, который был отделен от сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U данного изобретения и очищен. Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения, в основном, не содержит уроновой кислоты в качестве составляющего сахарида, и он не расщепляется фукоиданазой, продуцируемой Flavobacterium sp. SA-0082 (FERM-5402). Сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения не ограничивается по молекулярной массе, молекулярно-массовому распределению или составу сахарида. А именно, можно получить сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F,имеющий произвольную молекулярную массу и молекулярно-массовое распределение, и могут предусматриваться сульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие определенным образом прогнозируемые физико-химические свойства, такие как состав сахаридов и редуцированный конец и чрезвычайно высокая степень сульфирования. Будучи отделенным от сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, который, в основном, не имеет антикоагулянтной активности, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения имеет сильную антикоагулянтную активность. Таким образом, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F и/или продукты его расщепления могут использоваться в антикоагулянтных агентах в виде очищенных сульфированных фукозусодержащих полисахаридов и, кроме того, они полезны в качестве антигена против антитела антисульфированного фукозусодержащего полисахарида. Когда сульфированные фукозусодержащие полисахариды или продукты их расщепления согласно данному изобретению добавляют при концентрации 1 мкг/мл или более к культуральной среде злокачественных клеток, злокачественные клетки претерпевают апоптоз на протяжении от одного до нескольких дней после добавления. Другими словами, сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления имеют сильное действие, вызывая апоптоз. На нормальные клетки указанные вещества не оказывают какого-либо вызывающего апоптоз действия, ни токсичности. В частности, сульфированные фукозусодержащие полисахариды, происходящие из пригодных в пищу бурых водорослей и морского огурца, и продукты их расщепления высоко безопасны. Канцеростатическое лекарственное средство можно получить, используя сульфированные фукозусодержащие полисахариды и/или продукты их расщепления, которые имеют канцеростатическое действие, в качестве активного ингредиента, комбинируя их с широкоизвестными фармацевтическими носителями и затем подвергая полученную смесь переработке в лекарственный препарат. Канцеростатическое лекарственное средство можно получить способом, описанным выше. В общем, сульфированные фукозусодержащие полисахариды и/или продукты их расщепления данного изобретения смешивают с фармацевтически приемлемыми жидкими или твердыми носителями. После необязательного добавления растворителей, диспергирующих средств, эмульгаторов, буферов, стабилизаторов, наполнителей, связующих, дезинтеграторов, смазывающих средств и т.п., смесь подвергают переработке в твердые препараты, такие как таблетки, гранулы, порошки, дусты, капсулы или т.п., или в жидкие препараты, такие как растворы, суспензии, эмульсия или т.п. Альтернативно, смесь можно подвергнуть переработке в сухой препарат, который может быть разжижен добавлением в него соответствующего носителя до использования.-21 005580 Канцеростатическое лекарственное средство данного изобретения можно вводить либо перорально,либо парентерально, например, с помощью инъекции или внутривеннного капельного вливания. Фармацевтические носители могут быть надлежащим образом подобраны в зависимости от пути введения и лекарственной формы в соответствии со случаем указанного выше индуктора апоптоза. Канцеростатическое лекарственное средство данного изобретения вводят при помощи соответствующего пути введения, подходящего для лекарственной формы. Способ введения особо не ограничен. А именно, может быть выбрано внутреннее применение, наружное применение или инъекция. Инъекции могут вводиться, например, внутривенно, внутримышечно, подкожно или интрадермально. Препараты для наружного применения включают суппозитории. Доза канцеростатического лекарственного средства данного изобретения особо не конкретизируется, но она может определяться в зависимости от лекарственной формы, способа введения, цели использования и возраста, веса тела, состояний и т.д. пациента. В общем, доза может быть определена так, чтобы взрослый пациент получал от 1 до 1000 мг/день, предпочтительно от 10 до 200 мг/день, активного ингредиента. Само собой разумеется, доза варьируется в зависимости от различных факторов. Так, в некоторых случаях достаточно использовать дозу меньше, чем указанный выше уровень, а в других случаях требуется доза, превышающая указанный выше уровень. Лекарственное средство данного изобретения можно применять орально, как таковое. Альтернативно, его можно добавлять в произвольную пищу или питье для каждодневного потребления. Сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления согласно данному изобретению являются веществами природного происхождения и они не проявляют токсичности при оральном введении мышам. Лекарственные средства данного изобретения, как ожидают, могут быть использованы в качестве лечебных средств при инфекционных заболеваниях, иммунной депрессии, гипериммунности, рака, вирусных заболеваний и т.п. Также, их можно использовать для предупреждения образования злокачественной опухоли, поддерживая состояние здоровья. Способ индуцирования апоптоза данного изобретения используют, например, для изучения механизмов биологической защиты, иммунных функций и отношений к злокачественному новообразованию и вирусным заболеваниям, или разработки индукторов апоптоза. В частности, сульфированные фукозусодержащие полисахариды и продукты их расщепления согласно данному изобретению, полученные из съедобных бурых водорослей или морского огурца, которые принимали в виде пищи на протяжении длительного времени, являются высоко безопасными при оральном введении. Вследствие высоких молекулярных масс сульфированных полисахаридов, сульфированные фукозусодержащие полисахариды не могут быть использованы, как таковые, в качестве лекарственных средств,но их можно подвергнуть расщеплению до некоторой степени, увеличив тем самым их антигенность,гомогенность, антикоагулянтную активность и т.д. Данное изобретение обеспечивает фермент, способный селективно расщеплять только сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, и продукты расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, полученные обработкой сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данным ферментом. Штамм, подлежащий использованию в данном изобретении, может представлять любой Alteromonas, поскольку он может продуцировать фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид. В качестве конкретного примера штамма, способного продуцировать фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, можно указать Alteromonas sp. SA1009. Продукты расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F данного изобретения можно получить обработкой сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F ферментом,расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, происходящим от данного штамма. Штамм, который впервые был выделен из морской воды в Aomori, имеет следующие микологические свойства. а. Морфологические свойства(1) Область температур роста: соответствующий диапазон температур роста составляет от 15 до 30 С, не способен расти при 4 С или 40 С(14) Потребность в солевой среде Рост в свободной от NaCl среде: Рост в 1% NaCl среде: Рост в среде морской воды: +(16) GC содержание во внутриклеточной ДНК: 36%(18) Цвет колонии: нет образования характерного пигмента(21) Жгутик: полярный монотрихат Согласно классификации, описанной в Bergay's Manual of Systematic Bacteriology, 1, 343-352 (1984) и Bergay's Manual of Determinative Bacteriology, 9 75, 132-133 (1994), данный штамм идентифицирован как бактерия, принадлежащая роду Alteromonas. Однако физиологические свойства данного штамма не соответствуют ни одной из бактерий, описанных там. Также он показывает низкое GC содержание. Таким образом, его называют Alteromonas sp. SN-1009. Указанный выше штамм идентифицируют как Alteromonas sp. SN-1009 и он депонирован в NationalInstitute of Bioscience and Human-Technology (1-3, Higashi 1-chome, Tsukuba-shi, Ibaraki-ken 305, JAPAN) под регистрационным номером FERM Р-15436 с 13 февраля 1996 г. и депонирован в National Institute ofBioscience and Human-Technology, как описано выше, под регистрационным номером FERM BP-5747(причем перенос в международное депонирование запрошен 15 ноября 1996 г.). Питательные вещества, подлежащие добавлению к среде для инкубирования данного штамма, могут быть произвольными питательными веществами, поскольку штамм может их утилизировать, продуцируя фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения. Соответствующие примеры источника углерода включают сульфированные фукозусодержащие полисахариды, порошок морских водорослей, альгиновую кислоту, фукозу, галактозу, глюкозу, маннит,глицерин, сахарозу и мальтозу, в то время как примеры источника азота включают дрожжевой экстракт,пептон, касамино (casamino) кислоты, экстракт замоченной кукурузы, мясной экстракт, обезжиренную сою, сульфат аммония и хлорид аммония. Кроме того, среда может содержать неорганические вещества и соли металлов, такие как соли натрия, фосфаты, соли калия, соли магния и соли цинка. Кроме того, данный штамм растет очень хорошо в морской воде или искусственной морской воде,содержащей указанные выше питательные вещества. При инкубации штамма, продуцирующего фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения, выход варьируется в зависимости от условий инкубации. Вообще говоря, максимальный выход фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, может быть достигнут инкубацией штамма при температуре от 15 до 30 С и при значении рН среды от 6 до 9 в условиях аэрации/перемешивании в течение от 5 до 72 ч. Не говоря уже о том, что условия инкубации должны подбираться в зависимости от используемого штамма, состава среды и т.д. для того, чтобы выход фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения мог достичь максимального уровня.-23 005580 Фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения содержится как в клетках, так и в культуральном супернатанте. Указанный выше Alteromonas sp. SN-1009 инкубируют в соответствующей среде и клетки собирают и разрушают способом, обычно используемым для разрушения клеток, таким как обработка ультразвуком. Таким образом получают свободный от клеток экстракт. В дальнейшем, экстракт очищают при помощи техники очистки, обычно используемой в данной области, получая тем самым препарат очищенного фермента. Например, очистку можно осуществлять путем обессоливания, ионообменной хроматографией, колоночной хроматографией с гидрофобными носителем, гель-фильтрацией или т.п., получая при этом очищенный фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения, свободный от какой-либо другой фукоиданазы. Культуральный супернатант, полученный путем удаления клеток из указанной выше культуральной среды, кроме того, содержит большое количество данного фермента, который можно очистить способами, аналогично применяемым для очистки внутриклеточного фермента. Химические и физико-химические свойства фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения являются следующими:(i) функция: действие на сульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие следующие физико-химические свойства, т.е. на сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, и расщепление данного сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F:(a) составляющий его сахарид: в основном, свободен от уроновой кислоты; и(b) в основном, не способен расщепляться фукоиданазой, продуцируемой Flavobacterium sp. SA0082 (FERM BP-5402); но не способен действовать на сульфированные фукозусодержащие полисахариды, имеющие следующие физико-химические свойства, т.е. на сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U:(d) будучи расщепленный фукоиданазой, продуцируемой Fiavobacterium sp. SA-0082 (FERM BP5402), образует по крайней мере одно из соединений, выбранных из соединений, представленных следующими формулами (I), (II) и (III):ii) оптимальное значение рН: находится в диапазоне от приблизительно рН 7 до 8 (фиг. 20). Фиг. 20 представляет график, который показывает взаимосвязь между относительной активностью данного фермента и рН значением, где ордината соответствует относительной активности (%), в то время как абсцисса соответствует рН значению. Сплошную линию получают, используя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F с РА-редуцированным концом (PA-FF) в качестве субстрата, в то время как пунктирную линию получают, используя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, как будет описано в (V)-(2) ниже, в качестве субстрата.(iii) оптимальная температура: находится в диапазоне от приблизительно 30 до 35 С (фиг. 21). Фиг. 21 представляет график, который показывает взаимосвязь между относительной активностью данного фермента и температурой, где ордината соответствует относительной активности (%), в то время как абсцисса соответствует температуре (С). Сплошную линию получают, используя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F с РА-редуцированным концом (PA-FF) в качестве субстрата, в то время как пунктирную линию получают, используя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F,как будет описано в (V)-(2), как будет описано ниже, в качестве субстрата.(iv) молекулярная масса: молекулярная масса данного фермента, определенная гель-фильтрацией с использованием Sephacryl S-200 (производитель Pharmacia), составляет приблизительно 100000.(v) способ измерения ферментативной активности. Активность фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид,данного изобретения измеряют следующим способом. Сначала сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F и PA-FF, служащие в качестве субстрата фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения, получают на следующих стадиях (1)-(3).Nara Kikai Seisakusho) и обрабатывают 4,5 объемами 80% этанола при 80 С в течение 2 ч. Затем фильтруют и остаток подвергают указанным выше процедурам, т.е. экстракции 80% этанолом и фильтрованию трижды, получая 1,870 г остатка после промывания спиртом. К данному остатку добавляют 36 л воды и смесь подвергают обработке при 100 С в течение 2 ч и затем фильтруют, получая экстракт. Концентрацию соли в экстракте доводят до того же уровня, что и концентрация 400 мМ раствора хлорида натрия. Затем туда добавляют 5% цетилпиридинийхлорид до тех пор, пока осадок больше не образуется. После центрифугирования, осадок повторно промывают 80% этанолом для того, чтобы полностью удалить цетилпиридинийхлорид. Затем его растворяют в 3 л 2 М раствора хлорида натрия. После удаления нерастворимых веществ центрифугированием, суспендируют в нем 100 мл DEAE-Cellulofine А-800, уравновешенной 2 М хлоридом натрия. Суспензию перемешивают и затем фильтруют, чтобы удалить смолу. Фильтрат подают в 100 мл DEAE-Celluiofine A-800 колонку, уравновешенную 2 М хлоридом натрия, и фракцию, проходящую через нее, обессоливают и вещества с низкой молекулярной массой удаляют, используя ультрафильтрационную мембрану (исключение мембраной молекулярной массы: 100000). Полученный таким образом осадок удаляют центрифугированием. Супернатант сушат вымораживанием, по-25 005580 лучая 82,2 г очищенной смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, происходящих от(2) Получение сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F. 6 г указанной выше смеси сульфированных фукозусодержащих полисахаридов, происходящих отKjellmanieila crassifolia, растворяют в 600 мл 20 мМ ацетата натрия (рН 6,0), содержащего 0,2 М хлорида кальция. Затем раствор подают в 3600 мл DEAE-Sepharose FF колонку, предварительно уравновешенную 20 мМ ацетатом натрия (рН 6,0), содержащим 0,2 М хлорида натрия. Затем колонку тщательно промывают 20 мМ ацетатом натрия (рН 6,0), содержащим 0,2 М хлорида кальция, и выделяют элюированием с линейным градиентом хлорида натрия от 0 до 2 М. Фракции сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, элюированные при концентрации хлорида натрия 0,75 М и выше, собирают и обессоливают, используя ультрафильтр, снабженный ультрафильтрационной мембраной для исключения по молекулярной массе 100000. После сушки вымораживанием получают 3,3 г высушенного вымораживанием препарата сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F.(3) Получение PA-FF. 12 мг указанного выше высушенного вымораживанием препарата сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F растворяют в 480 мкл воды и 12-мкл порции полученного раствора пипетируют в 36 трубок. После высушивания вымораживанием редуцированный конец подвергают пиридил-(2)аминированию (РА), используя набор реагентов GlycoTAG и GlycoTAG, получая PA-FF. Полученный таким образом PA-FF растворяют в 10 мМ растворе ацетата аммония, содержащем 15 мл 10% метанола и подвергают гель-фильтрации, используя Cellulofine GCL-300 колонку (40900 мм). Высокомолекулярные фракции собирают и обессоливают, тщательно диализуя с использованием мембраны для диализа с размером пор 3500. Затем концентрируют до 5 мл на испарителе, получая PA-FF, подлежащий использованию в качестве субстрата фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид-F данного изобретения. Количество PA-FF, полученного таким образом, определяют как приблизительно 40 нмоль путем сравнения с интенсивностью флуоресценции меченой пиридил-(2)-аминированной фукозы (производитель Takara Shuzo Co., Ltd.; длина волны возбуждения: 320 нм, длина волны флуоресценции: 400 нм). Используя сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, полученный с помощью указанных выше стадий (1) и (2), активность фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения определяют следующим образом. А именно, 12 мкл 2,5% раствора сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, 6 мкл 1 М раствора хлорида натрия, 12 мкл 1 М раствора хлорида натрия, 72 мкл буфера (рН 7,5), содержащего 50 мМ уксусную кислоту, имидазол и Трис-гидрохлорид, и 18 мкл фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, данного изобретения смешивают вместе и подвергают взаимодействию при 30 С в течение 3 ч. Затем реакционную смесь обрабатывают при 100 С в течение 10 мин и центрифугируют. Затем степень расщепления измеряют, анализируя 100-мкл порцию реакционной смеси методом ВЭЖХ. В качестве контролей можно использовать реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но заменяя фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения буфером, используемым для растворения фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения, и другую реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но заменяя раствор сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F только водой. Данные контроли также анализируют с помощью ВЭЖХ. Количество фермента, с помощью которого фукозильные связи в 1 мкмоль сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F можно расщепить за 1 мин, принимают за одну Е. Расщепленные таким образом фукозильные связи рассчитывают согласно следующему уравнению: Активность (Е/мл)=(122,5)/(100MF)(MF/M)-10,12/(1800,01),где (122,5)/100: сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F (мг), добавленный к реакционной системе;MF: средняя молекулярная масса субстрата (сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F); М: средняя молекулярная масса реакционного продукта;(MF/M)-1: число расщеплений ферментом в одной молекуле сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F; 180: время реакции (мин); 0,01: объем (мл) раствора фермента и 0,12: объем (мл) всей реакционной смеси. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях; установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: OHpack KB-8 04 (8 мм 300 мм, производитель Showo Denko К.К.);-26 005580 элюент: 25 мМ имидазольный буфер (рН 8), содержащий 5 мМ азида натрия, 25 мМ хлорида кальция и 50 мМ хлорида натрия; детектирование: дифференциальный рефрактометрический детектор (Shodex RI-71, производительShowa Denko К.К.); скорость потока: 1 мл/мин; температура колонки: 25 С Чтобы измерить среднюю молекулярную массу продукта реакции, пуллулан (pullulan) с известной молекулярной массой (стандарт Р-82, производитель Showa Denko К.К.) анализируют методом ВЭЖХ в тех же самых условиях, как описано выше. Затем получают кривую, показывающую взаимосвязь между молекулярной массой пуллулана и временем удерживания на OHpack KB-804, и применяют в качестве стандартной кривой для определения молекулярной массы указанного выше продукта ферментативной реакции. Используя PA-FF, полученный на описанных выше стадиях (1)-(3), определяют активность фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения следующим способом. А именно, 2 мкл 8 пмоль/мкл раствора Pa-FF, 5 мкл 1 М раствора хлорида кальция, 10 мкл 1 М раствора хлорида натрия, 23 мкл воды, 50 мкл буфера (рН 8,2), содержащего 50 мМ уксусной кислоты, имидазол и Трис-гидрохлорид, и 10 мкл фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения смешивают вместе и подвергают взаимодействию при 30 С в течение 3 ч. Затем реакционную смесь обрабатывают при 100 С в течение 10 мин и центрифугируют. Затем степень расщепления измеряют методом ВЭЖХ, используя 80 мкл полученного таким образом образца. В качестве контролей можно использовать реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но заменяя фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения буфером, используемым для растворения фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид данного изобретения, и другую реакционную смесь, полученную тем же самым способом, но заменяя PA-FF раствор только водой. Данные контроли также анализируют с помощью ВЭЖХ. Количество фермента, с помощью которого фукозильные связи в 1 мкмоль сульфированного фукозусодержащего полисахарида можно расщепить за 1 мин, принимают за одну Е. Расщепленные таким образом фукозильные связи рассчитывают согласно следующему уравнению: Активность (Е/мл)=1610-6(MF/M)-11/(1800,01),-6 где 1610 : количество (мкмоль) PA-FF, добавленного к реакционной системе;MF: средняя молекулярная масса субстрата (сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F); М: средняя молекулярная масса реакционного продукта;(MF/M)-1: число расщеплений ферментом в одной молекуле сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F; 180: время реакции (мин) и 0,01: объем (мл) раствора фермента. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: OHpack SB-803 (8 мм 300 мм, производитель Showo Denko К.К.); элюент: 200 мМ раствор хлорида натрия, содержащий 5 мМ азида натрия и 10% диметилсульфоксид; детектирование: флуорометрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 320 нм, длина волны флуоресценции: 400 нм; скорость протока: 1 мл/мин и температура колонки: 50 С Чтобы измерить среднюю молекулярную массу продукта реакции, редуцированный конец меченого пуллулана с известной молекулярной массой (стандарт Р-82, производитель Showa Denko К.К.) подвергают пиридил-(2)-аминированию (РА), используя набор реагентов GlycoTAG и GlycoTAG, получая РАпуллуланы различных молекулярных масс. РА-пуллуланы различных молекулярных масс анализируют методом ВЭЖХ в тех же самых условиях, как описано выше. Затем получают кривую, показывающую взаимосвязь между молекулярной массой пуллулана и временем удерживания на OHpack SB-803 и применяют в качестве стандартной кривой для определения молекулярной массы указанного выше продукта ферментативной реакции. Белок определяют путем измерения поглощения раствора фермента при 280 нм. Расчет проводят,принимая поглощение 1 мг/мл раствора белка за 1,0. Был выяснен механизм действия фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения следующим способом.(1) Расщепление сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, и получение продукта расщепления. Очищенный сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, происходящий от Kjellmaniellacrassifolia, обрабатывают ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения, тем самым получая продукты его расщепления. Сначала получают фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид. А именно, Alteromonas sp. SN-1009 (FERM BP-5747) инокулируют в 600 мл среды, содержащей искусственную морскую воду (рН 8,2, производимая Jamarin Laboratory), содержащую 0,25% глюкозы,1,0% пептона и 0,05% экстракта дрожжей, которую пипетируют в 2-литровую колбу Эрленмейера и стерилизуют при 120 С в течение 20 мин. Затем штамм инкубируют при 25 С в течение 26 ч, получая посевную культуру. В 30-литровый ферментер подают 20 л среды, включающей искусственную морскую воду (рН 8,0), содержащую 1,0% пептона, 0,02% экстракта дрожжей, 0,2% указанного выше сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, происходящего от Kjellmaniella crassifolia, и 0,01% противовспенивающего агента (КМ 70, производимый Shin-Etsu Chemical Co., Ltd.), и стерилизуют при 120 С в течение 20 мин. После охлаждения среду инокулируют с 600 мл указанной выше посевной культурой,которую затем инкубируют при 24 С в течение 24 ч в условиях аэрации при скорости 10 л/мин и перемешивании при 250 об./мин. После завершения инкубации, культуральную среду центрифугируют, получая клетки и культуральный супернатант. Полученный таким образом культуральный супернатант концентрируют на ультрафильтре, исключающего фракцию с молекулярной массой 10000, и высаливают, используя 85% сульфат аммония. Полученный таким образом осадок собирают центрифугированием и тщательно диализуют против 20 мМ Трис гидрохлоридного буфера (рН 8,2), содержащего искусственную морскую воду, разбавленную в 10 раз. Таким образом получают 600 мл неочищенного фермента. 40 мл полученного таким образом неочищенного фермента, 44 мл искусственной морской воды,510 мг указанного выше сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F и 36 мл воды смешивают вместе и рН смеси доводят до 8. После взаимодействия при 25 С в течение 48 ч, реакционную смесь подвергают гель-фильтрации, используя Cellulofine GCL-300, и таким образом разделяют на четыре фракции, которые называют, в порядке молекулярной массы, как F-Fd-1 (молекулярная масса: более чем 25000), F-Fd-2 (молекулярная масса: 12000-25000), F-Fd-3 (молекулярная масса: 6500-12000) и F-Fd-4(молекулярная масса: 6500 или менее). Данные фракции обессоливают и сушат вымораживанием, получая 170, 270, 300 и 340 мг сухих препаратов соответственно. Фиг. 22 показывает результаты гель-фильтрации на Cellulofine GCL-300 продуктов ферментативного переваривания сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, т.е. продуктов расщепления. На фиг. 22 ордината соответствует поглощению при 480 нм (развитие окраски определялось фенолсернокислотным методом), в то время как абсцисса соответствует номеру фракции. Каждая фракция имеет 10 мл элюата. Колонка имеет объем 1075 мл и в качестве элюента используют 0,2 М раствор ацетата аммония, содержащего 10% этанола. На фиг. 22 незаполненный кружок показывает результат гель-фильтрации сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, который был подвергнут расщеплению ферментом, в то время как сплошной треугольник относится к результатам гель-фильтрации сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F до ферментативного расщепления. Приведенные выше результаты Cellulofine GCL-300 гель-фильтрации указывают, что продукт реакции фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения демонстрирует молекулярно-массовое распределение в пределах от 1000 до 30000.(2) Анализ на сахарид с редуцированным концом и состав нейтральных сахаридов в продукте ферментативной реакции. Порцию каждой из указанных выше F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4 отбирают на пробу и их редуцированный конец подвергают пиридил-(2)-аминированию (РА), используя набор реагентов GlycoTAG иGlycoTAG. Полученные таким образом (PA-F-Fd-1), (РА-F-Fd-2), (PA-F-Fd-3) и (PA-F-Fd-4) гидролизуют, обрабатывая 4N хлористо-водородной кислотой при 100 С в течение 3 ч и сахариды с редуцированным концом исследуют ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: PALPAK Type A (4,6 мм 150 мм, производитель Takara Shuzo Co., Ltd.); элюент: 700 мМ боратный буфер (рН 9,0):ацетонитрил = 9:1; детектирование: флуорометрический детектор F-1150 (производитель Hitachi, Ltd.), длина волны возбуждения: 310 нм, длина волны флуоресценции: 380 нм; скорость потока: 0,3 мл/мин; температура колонки: 65 С В результате, обнаружено, что (PA-F-Fd-1), (PA-F-Fd-2), (PA-F-Fd-3) и (PA-F-Fd-4) - все несут фукозу в виде сахарида с редуцированным концом. Кроме того, составы нейтральных сахаридов F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4 определяют следующим способом. Используемый в качестве субстрата сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F-28 005580 гидролизуют серной кислотой и редуцированные концы составляющих сахаридов подвергают пиридил(2)-аминированию (РА), используя набор реагентов GlycoTAG и GlycoTAG, и затем анализируют при помощи ВЭЖХ в тех же самых условиях, что используют при анализе указанных выше продуктов. В результате обнаружены только фукоза и галактоза, имеющие L- и D-конфигурацию соответственно. Таким образом, в отношении продуктов (ферментативной реакции) рассматриваются только L-фукоза и Dгалактоза. А именно, содержание D-галактозы, которая является одним из составляющих сахаридов, определяют следующим способом. Используя F-Kit Лактоза/Галактоза' (производитель Boehringer MannheimYamanouchi), в соответствии с описанием производителя конструируют реакционную систему, с помощью которой можно определить только D-галактозу. Раздельно F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4 гидролизуют 4N хлористо-водородной кислотой при 100 С в течение 2 ч и после нейтрализации подвергают определению в данной реакционной системе. С другой стороны, содержание L-фукозы, которая является другим составляющим сахаридом, определяют следующим способом. В соответствии со способом, описанным в Clinical Chemistry, 36, 474476 (1990), F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4 гидролизуют 4N хлористо-водородной кислотой при 100 С в течение 2 ч и после нейтрализации подвергают определению в данной реакционной системе. В результате, обнаружено, что F-Fd-1, F-Fd-2, F-Fd-3 и F-Fd-4 показывают отношение L-фукозы кD-галактозе 100:44, 100:27, 100:5 и 100:1 соответственно. Данные результаты можно суммировать следующим образом. Фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения действует на сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F и гидролизует фукозильные связи, тем самым образуя продукты расщепления с молекулярной массой приблизительно от 1000 до 30000. Среди данных продуктов расщепления,продукт, имеющий более высокую молекулярную массу, показывает большее содержание галактозы. Все продукты расщепления имеют L-фукозу в качестве редуцированного конца. Затем исследуют специфичность субстрата данного фермента путем обработки сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения. А именно, 12 мкл 2,5% раствора сульфированного фукозусодержащего полисахарида-U, 6 мкл 1 М раствора хлорида кальция, 12 мкл 1 М раствора хлорида натрия, 72 мкл 50 мМ имидазольного буфера (рН 7,5) и 18 мкл фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения (1,6 мЕ/мл) смешивают вместе и подвергают взаимодействию при 30 С в течение 3 ч. Затем реакционную смесь обрабатывают при 100 С в течение 10 мин и центрифугируют. Затем измеряют степень расщепления, анализируя 100-мкл порцию реакционной смеси методом ВЭЖХ. В качестве контроля можно использовать реакционную смесь, полученную тем же самым способом,но заменяя фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения буфером, используемым для растворения фермента, расщепляющего эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения. Данный контроль также анализируют с помощью ВЭЖХ. ВЭЖХ осуществляют в следующих условиях: установка: Модель L-6200 (производитель Hitachi, Ltd.); колонка: OHpack KB-804 (8 мм 300 мм, производитель Showo Denko К.К.); элюент: 25 мМ имидазольный буфер (рН 8), содержащий 5 мМ азида натрия, 25 мМ хлорида кальция и 50 мМ хлорида натрия; детектирование: дифференциальный рефрактометрический детектор (Shodex RI-71, производительShowa Denko К.К.); скорость протока: 1 мл/мин; температура колонки: 25 С В результате, сульфированный фукозусодержащий полисахарид-U совсем не расщепляется ферментом, расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения. Как описано выше, данное изобретение относится к ферментативной композиции, содержащей указанный выше фермент, расщепляющий эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, и источник кальция. Примеры источника кальция, который может быть использован в твердой композиции, включают соли кальция, такие как хлорид кальция, карбонат кальция, ацетат кальция, оксид кальция, гидроксид кальция и их гидраты. В жидкой композиции, где источник кальция растворен, суспендирован или эмульгирован в растворителе, таком как вода или спирт, с другой стороны, источник кальция может быть либо таким соединением, как цитированные выше, либо соединением, способным ионизоваться, например, при растворении. Данные источники кальция являются эффективными в активации или стабилизации фермента. Соответственно, указанная выше ферментативная композиция может дополнительно содержать добавки, обычно используемые в данной области в зависимости от цели, пока при этом не ухудшаются указанные выше действия источника кальция.-29 005580 Продукты расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F можно получить путем обработки вещества, содержащего сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, ферментом,расщепляющим эндосульфированный фукозусодержащий полисахарид, данного изобретения. В качестве вещества, содержащего сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, можно использовать, например, очищенный продукт сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F, указанную выше смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов или экстракт бурых водорослей с водным растворителем. Вещество, содержащее сульфированный фукозусодержащий полисахарид-F, можно растворить стандартным способом. Хотя сульфированные фукозусодержащие полисахариды могут быть растворены в растворе при наивысшей концентрации, концентрацию обычно подбирают, учитывая способность к обработке и титр фермента. Растворитель для раствора сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F может быть соответственно выбран из воды, буферов и т.п., в зависимости от цели. рН раствора обычно находится внутри области нейтрального рН и ферментативную реакцию обычно осуществляют при приблизительно 30 С. Молекулярную массу продуктов расщепления можно регулировать, контролируя количество фермента,время реакции и т.д. Затем продукты расщепления подвергают фракционированию по молекулярным массам, получая продукты расщепления сульфированного фукозусодержащего полисахарида-F с более равномерным распределением молекулярной массы. Фракционирование по молекулярной массе можно осуществлять,применяя обычно используемые методики, такие как гель-фильтрация, или использование мембраны для фракционирования по молекулярной массе. При необходимости, продукты расщепления могут быть дополнительно подвергнуты очистке, например, с помощью ионообменной смолы или активированного угля. Если требуется, продукты расщепления могут быть также обессолены, стерилизованы и высушены вымораживанием с получением сухого препарата продуктов расщепления данного изобретения. Примеры Далее для иллюстрации данного изобретения более подробно, а не с целью ограничения, приводятся следующие примеры, в которых процентные отношения даны по массе. Пример 1. 2 кг тщательно высушенной Kjellmaniella crassifolia размалывают на мельнице (производитель NaraKikai Seisakusho). Полученный таким образом сухой порошок суспендируют в 9 л 80% этанола и обрабатывают при 80 С в течение 2 ч. Затем смесь фильтруют через фильтровальную бумагу, получая осадок. Осадок повторно промывают этанолом и фильтруют трижды таким же способом, как описано выше, получая остаток после промывания этанолом. Остаток суспендируют в 40 л воды, обрабатывают при 95 С в течение 2 ч и фильтруют. Остаток промывают горячей водой, получая 36 л экстракта, содержащего сульфированные фукозусодержащие полисахариды Kjellmaniella crassifolia. 1,8 л полученного таким образом экстракта сушат вымораживанием, получая 15,4 г препарата сульфированного фукозусодержащего полисахарида. К оставшемуся экстракту добавляют хлорид натрия, до получения концентрации 0,4 М. Затем добавляют 5% цетилпиридинийхлорид до тех пор, пока не прекратиться образование осадка. Затем осадки собирают центрифугированием и суспендируют в 3 л 0,4 М водного раствора хлорида натрия с последующим центрифугированием и промывкой. После трехкратного повторения процедуры промывки к осадку добавляют 1 л 4 М водного раствора хлорида натрия. После тщательного перемешивания добавляют этанол, получая концентрацию 80%. Затем смесь перемешивают и центрифугируют, получая осадок. Осадок суспендируют в 80% этаноле и центрифугируют. Данные процедуры повторяют до тех пор, пока поглощение супернатанта при 260 нм не достигнет 0. Осадок растворяют в 3 л 2 М водного раствора хлорида натрия. После удаления нерастворимых веществ центрифугированием, туда добавляют 100 мл DEAE-Cellulofine A-800 (производитель Seikagaku Kogyo), уравновешенной 2 М водным раствором хлорида натрия. Далее добавленную выше смолу удаляют фильтрованием. Фильтрат подают вDEAE-Cellulofine A-800 колонку, уравновешенную 2 М водным раствором хлорида натрия, и неадсорбированную фракцию подвергают ультрафильтрации, используя ультрафильтр, снабженный полыми волокнами для исключения молекулярной массы 100000, тем самым полностью удаляя окрашивающие вещества и хлорид натрия. Затем нерастворимые вещества удаляют центрифугированием с последующим фильтрованием и сушкой вымораживанием. Высушенная вымораживанием смесь сульфированных фукозусодержащих полисахаридов весит 76 г. Пример 2. 2 кг тщательно высушенной Kjellmaniella crassifolia размалывают на мельнице (производитель NaraKikai Seisakusho). Полученный таким образом сухой порошок суспендируют в 9 л 80% этанола и обрабатывают при 80 С в течение 2 ч. Затем смесь фильтруют через фильтровальную бумагу, получая осадок. Осадок повторно промывают этанолом и фильтруют трижды таким же способом, как описано выше, получая остаток после промывания этанолом. Данный остаток суспендируют в 36 л 0,2 М раствора ацетата кальция, обрабатывают при 95 С в течение 2 ч и фильтруют. Остаток промывают 4 л 0,2 М раствора ацетата кальция, получая 36 л экстракта, содержащего сульфированные фукозусодержащие полисахариды