Способ очистки fc-содержащих белков

Изобретение относится к способу уменьшения концентрации свободных Fc-частиц в жидкости, содержащей Fc-содержащий белок, предусматривающему стадию катионообменной хроматографии. 017152 Область техники, к которой относится изобретение Данное изобретение относится к области очистки белков. Более конкретно, оно относится к очисткеFc-содержащих белков посредством катионообменной хроматографии, в частности, для уменьшения количества свободных Fc-частей в препарате Fc-содержащего белка. Уровень техники Белки стали коммерчески важными в качестве лекарственных средств, которые обычно называют"биологическими средствами". Одной из важнейших задач является развитие экономичных и эффективных способов для очистки белков в коммерческом масштабе. Хотя многие способы доступны теперь для крупномасштабного получения белков, неочищенные продукты, такие как супернатанты культур клеток,содержат на только желаемый продукт, но также примеси (загрязнения), которые трудно отделить от желаемого продукта. Хотя супернатанты культур клеток, экспрессирующих рекомбинантные белковые продукты, могут содержать меньше загрязнений, если эти клетки выращиваются в бессывороточной среде, белки клетки-хозяина (НСР) все еще требуют элиминации во время процесса очистки. Кроме того,органы здравоохранения требуют высоких стандартов чистоты для белков, предназначенных для введения человеку. Известен ряд хроматографических систем, которые широко применимы для очистки белков. Системы ионообменной хроматографии используются для разделения белков прежде всего на основе различий в заряде. Анионообменники могут классифицироваться как слабые или сильные. Заряженной группой на слабом анионообменнике является слабое основание, которое становится депротонированным и, следовательно, теряет свой заряд при высоком рН. ДЭАЭ-сефароза является примером слабого анионообменника, где аминогруппа может быть положительно заряженной ниже рН 9 и постепенно теряет свой заряд при более высоких величинах рН. Диэтиламиноэтил(ДЭАЭ) или диэтил(2 гидроксипропил)аминоэтил (QAE) имеют, например, хлорид в качестве противоиона. С другой стороны,сильный анионообменник содержит сильное основание, которое остается положительно заряженным на протяжении диапазона рН, обычно используемого для ионообменной хроматографии (рН 1-14). Qсефароза (Q обозначает четвертичный аммоний) является примером сильного анионообменника. Катионообменники могут быть также классифицированы как слабые или сильные. Сильный катионообменник содержит сильную кислоту (например, сульфопропильную группу), которая остается заряженной от рН 1 до 14; тогда как слабый катионообменник содержит слабую кислоту (например, карбоксиметильную группу), которая постепенно теряет свой заряд, когда рН уменьшается ниже 4 или 5. Карбоксиметил (СМ) и сульфопропил (SP) имеют, например, натрий в качестве противоиона. Другая хроматографическая смола основана на нерастворимом гидроксилированном кальцийфосфатном матриксе, называемом гидроксиапатитом. Гидроксиапатитная хроматография является способом очистки белков, который использует нерастворимый гидроксилированный фосфат кальция(Ca5(PO4)3 ОН)2, который образует как матрикс, так и лиганд. Функциональные группы состоят из пар положительно заряженных ионов кальция (С-сайтов) и кластеров отрицательно заряженных групп (Рсайтов). Взаимодействия между гидроксиапатитом и белками являются комплексными и многообразными. В одном способе взаимодействия положительно заряженные аминогруппы на белках связываются с отрицательно заряженными Р-сайтами, а карбоксильные группы белка взаимодействуют посредством координационного комплексообразования с С-сайтами (Shepard et al., 2000). Кристаллический гидроксиапатит был первым типом гидроксиапатита, использованным в хроматографии. Хроматография на керамическом гидроксиапатите (СНА) является дальнейшим развитием гидроксиапатитной хроматографии. Керамический гидроксиапатит имеет высокий срок службы (высокую прочность), хорошую способность связывания белка и может быть использован при более высоких скоростях потока и давлениях, чем кристаллический гидроксиапатит (Vola et al., 1993). Гидроксиапатит использовали в хроматографическом разделении белков, нуклеиновых кислот, а также антител. В гидроксиапатитной хроматографии колонку уравновешивают обычным образом и наносят пробу в фосфатном буфере низкой концентрации и затем адсорбированные белки элюируют в градиенте концентраций фосфатного буфера (Giovannini et al., 2000). Еще один способ очистки белков основан на аффинности представляющего интерес белка в отношении другого белка, который иммобилизован на хроматографической смоле. Примерами таких иммобилизованных лигандов являются белки бактериальных клеточных стенок - белок А и белок G, имеющие специфичность в отношении Fc-части некоторых иммуноглобулинов. Хотя как белок А, так и белок G имеют сильную аффинность в отношении IgG-антител, они имеют также варьирующиеся аффинности в отношении других классов и изотипов иммуноглобулинов. Белок А является белком в 43000 Да, который продуцируется бактериями Staphylococcus aureus и содержит четыре сайта связывания с Fc-районами IgG. Белок G продуцируется стрептококками группы G и имеет два сайта связывания для Fc-района IgG. Оба белка были широко охарактеризованы в отношении их аффинности с различными типами иммуноглобулинов. Другим развитием является белок A/G, генетически сконструированный белок, который объединяет связывающие способности белка А и G. Белок L является следующим бактериальным белком, происходящим из Peptostreptococcus, связывающимся с-1 017152 иммуноглобулинами и их фрагментами, содержащими легкие цепи Ig (Akerstrom and Bjork, 1989). Белок А-, белок G- и белок-L-аффинная хроматография широко используется для выделения и очистки антител. Поскольку сайты связывания для белка А и белка G находятся в Fc-районе иммуноглобулина, белок А- и белок G- (или белок A/G)-аффинная хроматография позволяет также очистку так называемых Fcслитых белков. Белок L связывается с легкими цепями Ig и, следовательно, может быть использован для очистки содержащих легкую цепь антител. Антитела, или иммуноглобулины (Ig), состоят из легких цепей и тяжелых цепей, связанных вместе дисульфидными связями. Первый домен, расположенный на аминоконце каждой цепи, является вариабельным в аминокислотной последовательности, обеспечивая обширный спектр связывающих специфичностей антитела. Эти домены известны как вариабельные тяжелые (VH) и вариабельные легкие (VL) области. Другие домены каждой цепи являются относительно инвариантными в аминокислотной последовательности и известны как константные тяжелые (СН) и константные легкие (CL) области. Основными классами антител являются IgA, IgD, IgE, IgG и IgM; и эти классы могут быть дополнительно подразделены на подклассы (изотипы). Например, класс IgG имеет четыре подкласса, а именноIgG1, IgG2, IgG3 и IgG4. Различия между классами антител происходят из различий в константных областях тяжелой цепи,содержащих 1-4 константных домена (СН 1-СН 4), в зависимости от класса иммуноглобулина. Между СН 1- и СН 2-доменами расположена так называемая шарнирная область. Эта шарнирная область особенно чувствительна к протеолитическому расщеплению; такой протеолиз дает два или три фрагмента в зависимости от точного сайта расщепления. Часть константной области тяжелой цепи, содержащую СН 2- и СН 3-домены, называют также "Fc"-частью иммуноглобулина. Таким образом, антитела являютсяFc-содержащими белками. Другим типом Fc-содержащих белков являются так называемые Fc-слитые белки. Известны несколько антител, которые используются в качестве терапевтических белков. Примерами рекомбинантных антител на рынке являются, например, абциксимаб, ритуксимаб, базиликсимаб, даклицумаб, паливицумаб, инфликсимаб, трастуцумаб, алемтуцумаб, адалимумаб, цетуксимаб, эфалицумаб,ибритумомаб, бевацицумаб или омалицумаб.Fc-слитые белки являются химерными белками, состоящими из эффекторного района белка, такого как Fab-район антитела или связывающий район рецептора, слитого с Fc-районом иммуноглобулина,который часто является иммуноглобулином G (IgG). Fc-слитые белки используются широко в качестве терапевтических средств, так как они предоставляют преимущества, придаваемые Fc-районом, такие как возможность очистки с использованием белка А- или белка G-аффинной хроматографии с аффинностями, варьирующимися в соответствии с изотипом IgG. IgG1, IgG2 и IgG4 человека связываются сильно с белком А, и все IgG человека, в том числе IgG3, связываются сильно с белком G; увеличенное время полужизни в системе кровообращения, так как Fc-район связывается с рецептором спасения FcRn, который защищает от лизосомной деградации; в зависимости от медицинского применения Fc-слитого белка могут быть желательными эффекторные функции Fc. Такие эффекторные функции включают в себя антителозависимую клеточную цитотоксичность (ADCC) через взаимодействия с Fc-рецепторами (FcR) и комплементзависимую цитотоксичность (CDC) посредством связывания с компонентом комплемента 1q (C1q). Изоформы IgG проявляют различные уровни эффекторных функций. IgG1 и IgG3 человека имеют сильные эффекты ADCC и CDC, в то время как IgG2 человека проявляет слабые эффекты ADCC и CDC. IgG4 человека проявляет слабые эффекты ADCC и не проявляет эффекты CDC. Время полужизни в сыворотке и эффекторные функции могут быть модулированы конструированием Fc-района для увеличения или уменьшения его связывания с FcRn, FcR и C1q соответственно в зависимости от терапевтического применения, предполагаемого для Fc-слитого белка. В ADCC Fc-район антитела связывается с Fc-рецепторами (FcR) на поверхности иммунных эффекторных клеток, таких как природные клетки-киллеры и макрофаги, приводя к фагоцитозу или лизису этих клеток-мишеней. В CDC эти антитела убивают клетки-мишени запуском каскада комплемента на поверхности клеток. Изоформы IgG проявляют различные уровни эффекторных функций, увеличивающиеся в последовательности IgG4IgG2IgG1IgG3. IgG1 человека проявляет высокие ADCC и CDC и является наиболее применимым для терапевтического применения против патогенов и раковых клеток. При некоторых обстоятельствах, например, когда истощение клетки-мишени является нежелательным, могут потребоваться аннулирование или уменьшение эффекторных функций. Напротив, в случае антител, предназначенных для применения в онкологии, увеличение эффекторных функций может улучшать их терапевтическую активность (Carter et al., 2006). Модификация эффекторных функций может достигаться конструированием Fc-района либо для улучшения, либо для уменьшения связывания антител с FcR или факторами комплемента. Связывание IgG с активирующими (FcRI, FcRIIa, FcRIIIa и FcRIIIb) и ингибирующими(FcRIIb) FcR или первым компонентом комплемента (C1q) зависит от остатков, локализованных в шарнирной области и СН 2-домене. Два района СН 2-домена являются решающими для FcR и связывания C1q комплемента и имеют уникальные последовательности в IgG2 и IgG4. Например, замена остатковIgG2 в положениях 233-236 в IgG1 сильно уменьшала ADCC и CDC (Armour et al., 1999 и Shields et al.,2001). Многочисленные мутации были произведены в СН 2-домене IgG и их действие на ADCC и CDC испытывали in vitro (Shields et al., 2001, Idusogie et al., 2001 и 2000, Steurer et al., 1995). В частности, сообщалось, что мутация аланина в Е 333 увеличивала как ADCC, так и CDC (Idusogie et al., 2001 и 2000). Увеличение времени полужизни терапевтического антитела является другим путем для улучшения его эффективности, делающим возможными более высокие уровни в кровотоке, менее частое введение и уменьшенные дозы. Это может быть достигнуто усилением связывания Fc-района с FcR новорожденного(FcRn). FcRn, который экспрессируется на поверхности эндотелиальных клеток, связывает IgG рНзависимым образом и защищает его от деградации. Было показано, что несколько мутаций, расположенных на границе между доменами СН 2 и СН 3, увеличивают время полужизни IgG1 (Hinton et al., 2004 иVaccaro et al., 2005). Следующая табл. 1 суммирует некоторые известные мутации Fc-района IgG (взятые из веб-сайта В классе Fc-слитых белках, имеющих терапевтическую применимость, Fc-районы были слиты с внеклеточными доменами некоторых рецепторов, принадлежащих к суперсемейству рецепторов фактора некроза опухолей (TNF-R) (Locksley et al., 2001, Bodmer et al., 2002, Bossen et al., 2006). Отличительным признаком членов суперсемейства TNFR является присутствие цистеин-богатых псевдоповторов во внеклеточном домене, описанных, например, Naismith and Sprang, 1998. Два рецептора TNF, p55 (TNFR1) и р 75 TNFR (TNFR2), являются примерами таких членов суперсемейства TNFR. Этанерцепт является Fc-слитым белком, содержащим растворимую часть TNFR p75(например, WO 91/03553, WO 94/06476). Под товарным названием Enbrel он продается для лечения эндометриоза, инфекции вируса гепатита С, инфекции ВИЧ, псориатического артрита, псориаза, ревматоидного артрита, астмы, анкилозирующего спондилита, сердечной недостаточности, реакции трансплантат против хозяина, пневмофиброза, болезни Крона. Ленерцепт является слитым белком, содержащим внеклеточные компоненты TNF-рецептора р 55 человека и Fc-часть IgG человека, и предназначен для потенциального лечения тяжелого сепсиса и рассеянного склероза.OX40 является также членом суперсемейства TNFR. Были получены слитые белки QX40-IgG1 иOX40-hIG4mut для лечения воспалительных и аутоиммунных заболеваний, таких как болезнь Крона.Fc-слитый белок BAFF-R, также называемого BR3, названный BR3-Fc, является растворимым рецептором-ловушкой из серии ингибиторов BAFF (В-клеточного активирующего фактора семействаTNF), развивается для потенциального лечения аутоиммунных заболеваний, таких как ревматоидный артрит (RA) и системная красная волчанка (SLE). ВСМА является следующим рецептором, принадлежащим к суперсемейству TNFR. Было описано,что слитый белок BCMA-Ig ингибирует аутоиммунное заболевание (Melchers, 2006). Другим рецептором суперсемейства TNF-R является TACI, трансмембранный активатор и взаимо-3 017152 действующий с CAML агент (von Bulow and Bram, 1997; US 5969102, Gross et al., 2000), который имеет внеклеточный домен, содержащий два цистеин-богатых псевдоповтора. TACI связывает два члена семейства лигандов фактора некроза опухолей (TNF). Один лиганд был назван BLyS, BAFF, нейтрокин-,TALL-1, zTNF4 или THANK (Moore et al., 1999). Другой лиганд был назван APRIL, лиганд 1 смертиTNRF или ZTNF2 (Hahne et al., J. Exp.Med. 188: 1185 (1998. Известны также слитые белки, содержащие растворимые формы рецептора TACI, слитые с Fcрайоном IgG, которые были названы TACI-Fc (WO 00/40716, WO 02/094852). TACI-Fc ингибирует связывание BLyS и APRIL с В-клетками (Xia et al., 2000). Он разрабатывается для лечения аутоиммунных заболеваний, в том числе системной красной волчанки (SLE), ревматоидного артрита (RA) и гематологических злокачественностей, а также для лечения рассеянного склероза (MS). Кроме этого, TACI-Fc разрабатывается для лечения множественной миеломы (MM) (Novak et al., 2004; Moreau et al., 2004) и неходжкинской лимфомы (NHL), хронического лимфоцитарного лейкоза (CLL) и макроглобулинемии Вальденстрема (WM). Вследствие терапевтической применимости Fc-содержащих белков, в частности антител и Fcслитых белков, существует потребность в значительных количествах высокоочищенного белка, который является достаточным для введения человеку. Сущность изобретения Одной из проблем, которые могут встречаться во время получения Fc-содержащих белков, является присутствие "свободных Fc-частиц", т.е. полипептидных фрагментов, происходящих из Fc-содержащего белка, который не содержит существенной части, происходящей из вариабельной области антитела или из другого специфического белка или домена, обычно присутствующих в Fc-слитом белке. Данное изобретение нацелено на эту проблему. Оно основано на развитии способа очистки для жидкости, композиции или препарата Fc-содержащего белка, при помощи которого может быть уменьшено количество свободных Fc-частиц, которые могут присутствовать в качестве примеси. Таким образом, это изобретение относится к способу уменьшения концентрации свободных Fcчастиц в жидкости, содержащей Fc-содержащий белок, причем этот способ предусматривает подвергание указанной жидкости катионообменной хроматографии. Во втором аспекте это изобретение относится к применению катионообменной хроматографии для уменьшения свободного Fc в препарате Fc-содержащего белка. В третьем аспекте это изобретение относится к очищенному Fc-содержащему белку, содержащему менее 5, или менее 2, или менее 1, или менее 0,5, или менее 0,2, или менее 0,1% свободных Fc-частиц. Краткое описание чертежей Фиг. 1 показывает невосстанавливающий окрашенный серебром электрофорез в ДСН-ПААГ различных фракций, происходящих из катионообменной хроматографии, описанной в примере 2. Дорожка 1: маркеры молекулярной массы, дорожка 2: очищенный TACI-Fc, дорожка 3: нанесенный препарат, дорожка 4: промывка 2, дорожка 5: элюат 2, дорожка 6: промывка 3, дорожка 7: элюат 3, дорожка 8: промывка 1, дорожка 9: элюат 1, дорожка 10: очищенный свободный Fc. Фиг. 2 показывает хроматографический профиль катионообменной хроматографии, описанной в примере 2. Краткое описание списка последовательностейSEQ ID NO: 1 является цистеиновой последовательностью-фингерпринтом (богатым цистеином псевдоповтором), общим для членов суперсемейства TNFR;SEQ ID NO: 2 является полноразмерной последовательностью рецептора TACI человека (например,описанной в WO 98/39361);SEQ ID NO: 3 является примером Fc-последовательности человека этого изобретения (например,описанной в WO 02/094852);SEQ ID NO: 4 является предпочтительным Fc-слитым белком этого изобретения, содержащим последовательности, произведенные из внеклеточной части TACI и Fc-части человека (например, описанным в WO 02/094852);SEQ ID NO: 7 является полинуклеотидом, кодирующим полипептид SEQ ID NO: 4. Подробное описание изобретения Данное изобретение основано на открытии, что катионообменная хроматография может уменьшать количество или степень свободных Fc-частиц, которые могут присутствовать в жидкости или композиции Fc-содержащего белка. Таким образом, это изобретение относится к способу уменьшения концентрации свободных Fcчастиц в жидкости, содержащей Fc-содержащий белок, причем этот способ предусматривает подвергание указанной жидкости катионообменной хроматографии. Жидкостью, содержащей Fc-содержащий белок, может быть любая композиция или любой препарат, такие как, например, биологическая жидкость, полученная из человека или животного, или жидкость, полученная из культуры клеток, такая как, например, супернатант культуры клеток. Этой жидко-4 017152 стью может быть также жидкость, полученная из другой стадии очистки, такая как, например, элюат или проходящая жидкость из стадии захвата или любой другой подходящей стадии очистки, как описано более подробно ниже. Термин "Fc-содержащий белок", в данном контексте, относится к любому белку, имеющему по меньшей мере один константный домен иммуноглобулина, выбранный из СН 1-, шарнирного, СН 2-, СН 3,СН 4-домена или их комбинации и предпочтительно шарнирного домена, СН 2- и СН 3-домена. Этот константный домен иммуноглобулина может быть произведен из любого из IgG, IgA, IgE, IgM или их комбинации либо их изотипа. Предпочтительно он произведен из IgG, например IgG1, IgG2, IgG3 или IgG4. Более предпочтительно он является IgG1.Fc-содержащий белок этого изобретения может быть мономером или димером. Fc-содержащий белок может быть также "псевдодимером" (иногда называемым "мономером"), содержащим димерную Fcчасть (например, димер из двух связанных дисульфидным мостиком конструкций шарнир-СН 2-СН 3), из которых только одна слита с дополнительной частью молекулы, такой как вариабельный домен иммуноглобулина, лигандсвязывающий и необязательно ингибирующий фрагмент рецептора, или любой другой белок. Примером такого псевдодимера является Fc-слитый белок, имеющий интерферон-, слитый с одной из двух конструкций шарнирная часть-СН 2-СН 3 IgG, например, такой как описанный в WO 2005/001025.Fc-содержащий белок может быть гетеродимером, содержащим две разные части, не являющиеся иммуноглобулином, или вариабельные домены иммуноглобулина, или гомодимером, содержащим две копии единственной части не иммуноглобулина или вариабельного домена иммуноглобулина. В соответствии с данным изобретением Fc-часть Fc-содержащего белка может быть также модифицирована для модуляции эффекторных функций. Например, могут быть введены следующие мутации Fc согласно положениям EU-индексов (Kabat etal., 1991), если эта Fc-часть молекулы произведена из IgG1:E233P/L234V/L235A/G236 + A327G/A330S/P331S Е 333 А; K322 А. Дополнительными Fc-мутациями могут быть, например, замены в положениях EU-индексов, выбранных из 330, 331, 234 или 235, или их комбинации. Аминокислотная замена в EU-индекс-положении 297, расположенном в домене СН 2, также может быть введена в Fc-часть в контексте данного изобретения с элиминацией потенциального сайта присоединения N-связанного углевода. Кроме того, остаток цистеина в EU-индекс-положении 220 может быть также заменен остатком серина, исключающим остаток цистеина, который обычно образует дисульфидные связи с константной областью легкой цепи иммуноглобулина. Согласно данному изобретению предпочтительно Fc-часть содержит SEQ ID NO: 3 или состоит изSEQ ID NO: 3 либо кодируется полинуклеотидом, содержащим SEQ ID NO: 6. В предпочтительном варианте осуществления Fc-содержащий белок содержит вариабельную область иммуноглобулина, например один или несколько вариабельных доменов тяжелой цепи и/или один или несколько вариабельных доменов легкой цепи. Предпочтительно это антитело содержит один или два вариабельных домена тяжелой цепи. Более предпочтительно это антитело дополнительно содержит один или два вариабельных домена легкой цепи. Предпочтительно этот Fc-содержащий белок является антителом. Термин "антитело" относится к иммуноглобулину или его фрагменту и включает в себя любой полипептид, содержащий антигенсвязывающий сайт. Этот термин включает в себя, но не ограничиваются ими, поликлональные, моноклональные, моноспецифические, полиспецифические, неспецифические,гуманизированные антитела, антитела человека, химерные, одноцепочечные, синтетические, рекомбинантные, гибридные, мутированные, трансплантированные или генерированные in vitro антитела. Это антитело может быть выбрано из любого из известных изотипов антител, например IgA, Ig, IgD, IgE,IgM. Это антитело может быть мономером, димером или мультимером, таким как тример или пентамер. Примерами антител, которые могут быть очищены в соответствии с данным изобретением, являются абциксимаб, ритуксимаб, базиликсимаб, даклицумаб, паливицумаб, инфликсимаб, трастуцумаб, алемтуцумаб, адалимумаб, цетуксимаб, эфалицумаб, ибритумомаб, бевацицумаб или омалицумаб. Дополнительными примерами антител, которые могут быть подвергнуты катионообменной хроматографии в соответствии с данным изобретением, являются антитела против CD2, CD3, CD4, CD8, CD11a, CD14,CD18, CD20, CD22, CD23, CD25, CD33, CD40, CD44, CD52, CD80, CD86, CD147, CD164, IL-2-рецептора,IL-4-рецептора, IL-6-рецептора, IL-12-рецептора, субъединиц IL-18-рецептора (IL-18R-альфа, IL-18Rбета), TACI, BCMA, BAFF-R, EGF-рецептора, VEGF-рецептора, интегрина 47, интегрина VLA4, интегринов В 2, TRAIL-рецепторов 1, 2, 3 и 4, RANK, лиганда RANK, адгезионной молекулы эпителиальных клеток (ЕрСАМ), молекулы 3 межклеточной адгезии (ICAM-3), CTLA4, Fc-гамма-I, II или IIIрецептора, HLA-DR 10 бета, антигена HLA-DR, L-селектина.-5 017152 Антитела, направленные против TNF, Blys или интерферона-, являются дополнительными примерами представляющих терапевтический интерес антител.Fc-слитые белки являются также Fc-содержащими белками, которые предпочтительно подвергают способу этого изобретения. Термин "Fc-слитый белок", в данном контексте, обозначает белки, в частности терапевтические белки, содержащие произведенную из иммуноглобулина часть молекулы, которая будет называться здесь"Fc-частью", и часть молекулы, произведенную из второго, не являющегося иммуноглобулином белка,которая будет называться здесь "терапевтической частью молекулы", независимо от того, предполагается или не предполагается лечение заболевания. Терапевтические Fc-слитые белки, т.е. Fc-слитые белки, предназначенные для лечения или предупреждения заболевания животного или предпочтительно для лечения человека либо введения человеку,особенно пригодны для очистки в соответствии с этим изобретением. Любой Fc-слитый белок может быть очищен в соответствии с данным изобретением, например интерферонсодержащий слитый белок. Предпочтительно способ этого изобретения является способом очистки Fc-слитого белка, содержащего лигандсвязывающий фрагмент, такой как весь внеклеточный домен или часть внеклеточного домена члена суперсемейства рецепторов фактора некроза опухолей(TNFR). Терапевтической частью Fc-слитого белка может быть, например, ЕРО, ТРО, гормон роста, интерферон-альфа, интерферон-бета, интерферон-гамма, PDGF-бета, VEGF, IL-1-альфа, IL-1-бета, IL-2, IL-4,IL-5, IL-8, IL-10, IL-12, IL-18, IL-18-связывающий белок, TGF-бета, TGF-альфа или TNF-бета или их производные. Терапевтическая часть молекулы этого изобретения может быть также произведена из рецептора,например трансмембранного рецептора, может быть предпочтительно произведена из внеклеточного домена рецептора и, в частности, лигандсвязывающего и необязательно ингибирующего фрагмента внеклеточной части или домена конкретного рецептора. Примерами представляющих интерес рецепторов являются CD2, CD3, CD4, CD8, CD11a, CD14, CD18, CD20, CD22, CD23, CD25, CD33, CD40, CD44,CD52, CD80, CD86, CD147, CD164, IL-2-рецептор, IL-4-рецептор, IL-6-рецептор, IL-12-рецептор, субъединицы IL-18-рецептора (IL-18R-альфа, IL-18R-бета), EGF-рецептор, VEGF-рецептор, интегрин альфа 4/бета 7, интегрин VLA4, интегрины В 2, TRAIL-рецепторы 1, 2, 3 и 4, RANK, лиганд RANK, адгезионная молекула эпителиальных клеток (ЕрСАМ), молекула 3 межклеточной адгезии (ICAM-3), CTLA4 (который является цитотоксическим Т-лимфоцит-ассоциированным антигеном), Fc-гамма-1-рецептор, HLADR 10 бета, антиген HLA-DR, L-селектин. Высокопредпочтительным является то, что терапевтическая часть молекулы этого изобретения произведена из рецептора, принадлежащего к суперсемейству TNFR. Эта терапевтическая часть молекулы может быть, например, внеклеточным доменом TNFR1 (р 55), TNFR2 (р 75), ОХ 40, остеопротегерином, CD27, CD30, CD40, RANK, DR3, Fas-лигандом, TRAIL-R1, TRAIL-R2, TRAIL-R3, TAIL-R4, NGFR,AITR, BAFFR, BCMA, TACI или может быть произведена из них. Согласно данному изобретению эта терапевтическая часть молекулы, произведенная из члена суперсемейства TNFR, предпочтительно содержит весь внеклеточный домен этого члена TNFR или часть внеклеточного домена этого члена TNFR и более предпочтительно содержит лигандсвязывающий фрагмент такого члена TNFR. Следующая табл. 5 содержит список членов суперсемейства TNFR, из которых может быть произведена терапевтическая часть молекулы в соответствии с данным изобретением и их соответствующих лигандов. "Лигандсвязывающий фрагмент" члена этого семейства TNFR может быть легко определен квалифицированным в данной области специалистом, например, в простом анализе in vitro, измерением связывания между белковым фрагментом этого рецептора и соответствующим лигандом. Таким анализом может быть, например, простой сэндвич-анализ in vitro типа RIA или ELISA, в котором один из этих белков, например фрагмент рецептора, иммобилизуют с носителем (например, планшетом ELISA) и инкубируют после подходящего блокирования сайтов связывания белка на этом носителе со вторым белком, например лигандом. После инкубирования связывание лиганда детектируют, например, с использованием радиоактивного мечения в сцинтилляционном счетчике. Связывание лиганда может быть также определено с меченым антителом или первым лиганд-специфическим антителом и вторым, меченым антителом, направленным против константной части первого антитела. Таким образом, связывание лиганда может быть легко определено в зависимости от используемой метки, например, в цветной реакции. Предпочтительно способ данного изобретения предназначен для очистки Fc-слитого белка, содержащего терапевтическую часть молекулы, произведенную из члена суперсемейства TNFR, выбранного из членов суперсемейства TNFR, приведенных в списке в табл. 5. В предпочтительном варианте осуществления Fc-слитый белок содержит терапевтическую часть,выбранную из внеклеточного домена TNFR1, TNFR2 или их TNF-связывающего и необязательно ингибирующего фрагмента. В следующем предпочтительном варианте осуществления Fc-слитый белок содержит терапевтическую часть, выбранную из внеклеточного домена BAFF-R, ВСМА или TACI или их фрагмента, связывающего по меньшей мере один из Blys или APRIL. Один анализ для тестирования способности связывания с Blys или APRIL описан, например, в Hymowitz et al., 2006. Еще в одном предпочтительном варианте осуществления терапевтическая часть Fc-слитого белка содержит богатый цистеином псевдоповтор SEQ ID NO: 1. Предпочтительно эта терапевтическая часть молекулы произведена из TACI. TACI является предпочтительно TACI человека. SEQ ID NO: 2 соответствует аминокислотной последовательности полноразмерного рецептора TACI (также вход SwissProt 014836). Более предпочтительно эта терапевтическая часть молекулы содержит растворимую часть TACI, предпочтительно произведенную из внеклеточного домена TACI. Предпочтительно произведенная из TACI терапевтическая часть молекулы содержит, по меньшей мере, аминокислоты 33-67 SEQ ID NO:2 и/или аминокислоты 70-104 SEQ ID NO:2. В одном предпочтительном варианте осуществления внеклеточный домен TACI, включенный в терапевтическую часть согласно данному изобретению, содержит аминокислоты (или состоит из них) 1-166 SEQ ID NO: 2,или аминокислоты 30-166 SEQ ID NO: 2, или аминокислоты 30-119 SEQ ID NO: 2, или аминокислоты 30110 SEQ ID NO: 2. Все из этих терапевтических частей молекул являются предпочтительными для получения Fc-слитого белка для очистки по способу этого изобретения и комбинируются с Fc-частями, описанными подробно выше, и, в частности, с Fc-частью молекулы, содержащей SEQ ID NO: 3 или состоя-7 017152 щей из SEQ ID NO: 3. Один высокопредпочтительный Fc-слитый белок, подлежащий очистке с использованием данного изобретения, содержит SEQ ID NO: 4 или состоит из SEQ ID NO: 4 либо кодируется полинуклеотидом SEQ ID NO: 7. Таким образом, чрезвычайно предпочтительно, чтобы Fc-слитый белок содержал полипептид, выбранный из:g) полипептида, кодируемого полинуклеотидом, гибридизующимся с комплементом SEQ ID NO: 5 или 6 либо 7 при условиях высокой строгости; иh) мутеина любого из с)-e) или f), имеющего по меньшей мере 80, или 85, или 90, или 95% идентичность последовательности с полипептидом с)-e) или f); причем этот полипептид связывается по меньшей мере с одним из Blys или APRIL. Термин "свободные Fc-части", "свободная Fc-часть" или просто "свободный Fc", в данном контексте, включает в себя любую часть Fc-содержащего белка, подлежащего очистке в соответствии с данным изобретением, которая произведена из константного домена или константных доменов иммуноглобулина, но не содержит полные дополнительные домены. Таким образом, если Fc-содержащий белок содержит вариабельные домены иммуноглобулина, свободный Fc не содержит существенных частей вариабельных доменов. Если Fc-содержащий белок является Fc-слитым белком, свободный Fc не содержит существенных частей терапевтической части этого Fc-слитого белка. Свободный Fc может содержать димеры шарнирной области, домены СН 2 и СН 3 IgG, которые не соединены или не связаны с существенными частями терапевтической части молекулы или вариабельных доменов иммуноглобулина, и соответствует, например, Fc-части, которая генерируется расщеплением папаином. "Существенная часть" может быть, например, не менее 80, 85, 90, 95, 98 или 99% полноразмерного вариабельного домена или терапевтической части молекулы, присутствующей в Fc-содержащем белке. Мономеры, произведенные из Fc-части молекулы, могут также содержаться в этой фракции свободного Fc. Понятно, что свободный Fc может все еще содержать ряд аминокислотных остатков из терапевтической части молекулы, таких как, например, одну-пятьдесят, или одну-двадцать, или одну-десять,или одну-пять аминокислот, или одну или две отдельные аминокислоты, принадлежащие к терапевтической части молекулы или вариабельному домену, все еще слитых с Fc-частью. Катионообменная хроматография может проводиться на любой подходящей катионообменной смоле, такой как, например, слабые или сильные катионообменники, как объясняется выше в разделе "Уровень техники" этого изобретения. Предпочтительно катионообменную хроматографию проводят на сильной катионообменной смоле. Более предпочтительно катионообменный материал содержит сшитый метакрилат, модифицированныйSO3 группами. Колонка, коммерчески доступная под товарным названием Fractogel EMD SO3- (изMerck), является примером катионообменной смолы, которая особенно пригодна в контексте данного способа. Предпочтительно жидкость или композицию, содержащую Fc-содержащий белок, наносят на катионообменную колонку при рН по меньшей мере на одну единицу более низком, чем изоэлектрическая точка (pI) указанного Fc-слитого белка. Предпочтительно после нанесения эту колонку промывают буфером, имеющим проводимость 6-10 мСм/см и рН 5,5-7,5. Этот буфер может, например, иметь проводимость 6,1, 6,2, 6,3, 6,4, 6,5, 6,6, 6,7, 6,8, 6,9, 7, 7,1, 7,2,7,3, 7,4, 7,5, 7,6, 7,7, 7,8, 7,9, 8, 8,1, 8,2, 8,3, 8,4, 8,5, 8,6, 8,7, 8,8, 8,9, 9, 9,1, 9,2, 9,3, 9,4, 9,5, 9,6, 9,7, 9,8 или 9,9 мСм/см. Более предпочтительно проводимость находится в диапазонах от 7,6 до 9,2, т.е. 8,40,8 мСм/см. Эту стадию промывания предпочтительно проводят при рН в диапазоне от 5,5 до 7,5, предпочтительно от 6,0 до 7,0. рН этого буфера может быть, например, равен 5,5, 5,6, 5,7, 5,8, 5,9, 6,0, 6,1, 6,2, 6,3, 6,4, 6,5, 6,6, 6,7,6,8, 6,9, 7,0, 7,1, 7,2, 7,3, 7,4 или 7,5. В следующем предпочтительном варианте осуществления стадию промывания проводят в буфере,содержащем 60-140, предпочтительно 70-130, более предпочтительно 75-125 мМ фосфат натрия. Этот буфер может содержать 65, 70, 75, 80, 85, 90, 95, 100, 105, 110, 115, 120, 125, 130, 135 или 140 мМ фосфат натрия. В дополнительном предпочтительном варианте осуществления эту катионообменную колонку элюируют при рН в диапазоне от 7,0 до 8,5, предпочтительно 7,25-7,3, или 7,35, или 7,4, или 7,45, или 7,5, или 7,55, или 7,6, или 7,65, или 7,7, или 7,75, или 7,8, или 7,85, или 7,9, или 7,95, или 8,0, или 8,05,или 8,1, или 8,15, или 8,2, или 8,25, или 8,3, или 8,35, или 8,4, или 8,45, или 8,5.-8 017152 Элюция может предпочтительно проводиться при проводимости в диапазоне от 15 до 22 мСм/см. Например, проводимость может быть выбрана из 16, 17, 18, 19, 20, 21 или 22 мСм/см. Предпочтительным буфером для элюции является фосфатный буфер. В соответствии с данным изобретением катионообменная хроматография может быть предпочтительно использована для элиминации или уменьшения свободного Fc в 5-15-кратном диапазоне. Таким образом, может быть достигнуто уменьшение концентрации свободного Fc в содержащих Fcсодержащий белок жидкости, препарате или композиции до менее 20, или менее 15, или менее 10, или менее 5, или менее 2, или менее 1, или менее 0,8, или менее 0,5, или менее 0,3, или менее 0,2, или менее 0,1% общей концентрации белка. В предпочтительном варианте осуществления катионообменная хроматография может быть использована в способе очистки, имеющем одну или несколько дополнительных стадий, предпочтительно выбранных из аффинной хроматографии, анионообменной хроматографии и гидроксиапатитной хроматографии. В высокопредпочтительном варианте осуществления способ данного изобретения используют в качестве второй стадии схемы очистки Fc-содержащего белка, включающей в себя следующие стадии:b) подвергание элюата из стадии а) катионообменной хроматографии;c) подвергание элюата из стадии b) анионообменной хроматографии иd) подвергание проходящей фракции стадии с) гидроксиапатитной хроматографии и сбор элюата для получения очищенного Fc-содержащего белка. В соответствии с данным изобретением жидкость, содержащую Fc-содержащий белок, сначала подвергают белок А-, или белок G-, или белок L-, или белок A/G-аффинной хроматографии. Эта жидкость может быть предпочтительно материалом культуры клеток, например солюбилизированными клетками, более предпочтительно супернатантом культуры клеток. Термин "супернатант культуры клеток" относится, в данном контексте, к среде, в которой культивируются клетки и в которую секретируются белки при условии, что они содержат подходящие клеточные сигналы, так называемые сигнальные пептиды. Предпочтительно экспрессирующие Fc-содержащий белок клетки культивируют в условиях бессывороточного культивирования. Так, предпочтительно супернатант культуры клеток лишен компонентов сыворотки животных. Наиболее предпочтительно среда культуры клеток является средой с определенным химическим составом. Белки A, G, A/G или L, используемые для аффинной хроматографии, могут быть, например, рекомбинантными. Они могут быть также модифицированы для улучшения его свойств (например, как в смоле, называемой MabSelect SuRe, коммерчески доступной из GE Healthcare). В предпочтительном варианте осуществления стадию а) проводят на смоле, содержащей сшитую агарозу, модифицированную рекомбинантным белком А. Колонка, коммерчески доступная под названием Mabselect Xtra (из GE Healthcare), является примером аффинной смолы, которая особенно пригодна для стадии а) этого способа. Белок А-, или белок G-, или белок L-аффинная хроматография используется предпочтительно в качестве стадии захвата и, следовательно, служит для очистки Fc-содержащего белка, в частности элиминации белков клетки-хозяина и агрегатов Fc-содержащего белка, и для концентрирования препарата Fcсодержащего белка. Термин "агрегаты", в данном контексте, относится к агрегатам белка и включает в себя мультимеры(такие как димеры, тетрамеры или агрегаты более высокого порядка) Fc-содержащего белка, подлежащего очистке, и могут приводить, например, к высокомолекулярным агрегатам. Аффинная хроматография имеет дополнительное преимущество уменьшения уровня агрегатов в 2-4 раза. С использованием белка А-, или G-, или A/G-, или L-аффинной хроматографии уровни белков клетки-хозяина могут быть уменьшены в 100-300 раз. В предпочтительном варианте осуществления этого изобретения элюцию в стадии а) проводят при рН в диапазоне 2,8-4,5, предпочтительно 3,0-4,2, более предпочтительно при 3,5, 3,55, 3,6, 3,65, 3,7, 3,75,3,8, 3,85, 3,9, 3,95, 4,0, 4,05, 4,1 или 4,15. Элюция в стадии а) может также проводиться градиентом рН,предпочтительно градиентом рН от 4,5 до 2,8. В следующем предпочтительном варианте осуществления элюцию в стадии а) проводят в буфере,выбранном из ацетата натрия или цитрата натрия. Подходящие концентрации буфера выбраны, например, из 50, или 100, или 150, или 200, или 250 мМ. Согласно данному изобретению элюат из белков А-, или G-, или A/G-, или L-хроматографии подвергают катионообменной хроматографии, описанной подробно выше. Предпочтительно элюат катионообменной хроматографии, т.е. стадии (b), разбавляют или диализуют в подходящий буфер для нанесения перед нанесением его на анионообменную колонку. Анионообменную колонку предпочтительно также уравновешивают буфером для нанесения. Предпочтительный рН для буфера нанесения является по меньшей мере на одну единицу более низким, чем pI. Подходящие величины рН находятся в диапазоне от 6,0 до 8,5, предпочтительно от 7,0 до-9 017152 8,0, например 7,0, 7,05, 7,1, 7,15, 7,2, 7,25, 7,3, 7,35, 7,4, 7,45, 7,5, 7,55, 7,6, 7,65, 7,7, 7,75, 7,8, 7,85, 7,9,7,95 или 8,0. Предпочтительная проводимость для буфера для нанесения находится в диапазоне 3,0-4,6 мСм/см. Подходящим буфером для уравновешивания/нанесения может быть, например, фосфат натрия при концентрации в диапазоне от 5 до 35, предпочтительно от 20 до 30 мМ. Например, концентрация буфера может быть 10, 15, 20, 25, 30 мМ. В рамках данного изобретения протекающую жидкость (также называемую проскакивающей жидкостью) анионообменной хроматографии, содержащую представляющий интерес Fc-содержащий белок, собирают. Стадия с) этого способа данного изобретения дополнительно уменьшает агрегаты в 3-5 раз и белки клетки-хозяина в 30-70 раз. Согласно данному изобретению проходящую жидкость анионообменной хроматографии стадии с) используют затем для дополнительной очистки гидроксиапатитной хроматографией. Любая гидроксиапатитная смола может быть использована для проведения стадии d) способа по этому изобретению. В предпочтительном варианте осуществления стадию d) проводят на керамической гидроксиапатитной колонке, такой как гидроксиапатитная смола типа I или типа II. Гидроксиапатитная смола может иметь частицы любого размера, например 20, 40 или 80 мкм. В высокопредпочтительном варианте осуществления эта керамическая гидроксиапатитная смола содержит частицы, имеющие размер 40 мкм. Гидроксиапатитной смолой, которая особенно пригодна для стадии d) этого способа, является колонка, коммерчески доступная под названием Керамический гидроксиапатит типа I CHT, 40 мкм. В предпочтительном варианте осуществления проходящую жидкость из стадии с) непосредственно наносят на гидроксиапатитную смолу, т.е. без предварительного разведения или диализа в подходящий буфер для нанесения. Нанесение предпочтительно проводят при рН 6,5-7,5, например 6,6, 6,7, 6,8, 6,9,7,1, 7,2, 7,3 или 7,4 и предпочтительно 7,0. В следующем предпочтительном варианте осуществления элюцию в стадии d) проводят в присутствии фосфата натрия в диапазоне от 2 до 10 мМ, предпочтительно в диапазоне от 1,75 до 5,25 мМ, например при 3, 3,25, 3,5, 3,75, 4, 4,25, 4,5, 4,75, 5 мМ. Еще в одном предпочтительном варианте осуществления элюцию в стадии d) проводят при рН в диапазоне от 6,0 до 7,0, например при 6,1, 6,2, 6,3, 6,4, 6,5, 6,6, 6,7, 6,8, 6,9. В другом предпочтительном варианте осуществления элюцию в стадии d) проводят в присутствии хлорида натрия в диапазоне от 0,4 до 1 М, предпочтительно при 0,45, 0,5, 0,55, 0,6, 0,65, 0,7, 0,75, 0,8,0,85, 0,9, 0,95 М, наиболее предпочтительно при 0,6 М. Согласно данному изобретению собирают элюат гидроксиапатитной хроматографии, содержащий окончательно очищенный препарат Fc-содержащего белка. Подходящими материалами матрикса, т.е. материалами-носителями для хроматографических смол,используемых в стадиях а)-с), которые могут быть использованы в связи с данным изобретением, могут быть, например, агароза (сефароза, супероза), декстран (сефадекс), полипропилен, метакрилатцеллюлоза, полистирол/дивинилбензол или т.п. Эти материалы смол могут присутствовать в различных сшитых формах в зависимости от конкретного применения. Объем смолы, длина и диаметр используемой колонки, а также динамическая емкость и скорость потока зависят от нескольких параметров, таких как объем обрабатываемой жидкости, концентрация белка в жидкости, подвергаемой способу этого изобретения, и т.д. Определение этих параметров для каждой стадии находится в пределах средней квалификации специалиста в данной области. В предпочтительном варианте осуществления данного способа очистки выполняют одну или несколько стадий ультрафильтрации. Ультрафильтрация применима для удаления малых органических молекул и солей в элюатах, происходящих из предыдущих хроматографических стадий, для уравновешивания Fc-содержащего белка в общем буфере или для концентрирования Fc-содержащего белка до желаемой концентрации. Такая ультрафильтрация может, например, выполняться на ультрафильтрационных мембранах с порами, позволяющими удаление компонентов, имеющих молекулярные массы ниже 5, 10, 15, 20, 25, 30 или более кДа. Предпочтительно ультрафильтрацию проводят между стадиями b) и с) и/или после стадии d). Более предпочтительно проводят две стадии ультрафильтрации, одну между стадиями b) и c) и одну после стадии d). Если белок, очищенный в соответствии с этим способом данного изобретения, предназначен для введения людям, полезно включить одну или несколько стадий удаления вирусов в этом способе. Предпочтительно стадию фильтрации для удаления вирусов проводят после стадии d). Более предпочтительно этой стадией фильтрации для удаления вируса является стадия нанофильтрации, где этот фильтр имеет номинальный размер пор 20 нм. Способ по данному изобретению и, в частности, стадии а), с), d) в комбинации с нанофильтрацией эффективно элиминируют вирусную нагрузку до объединенной LRV (logвеличины уменьшения) до приблизительно 15-25. Для облегчения хранения или транспортировки, например, этот материал может быть замороженным и оттаиваться до и/или после любой стадии очистки этого изобретения. Согласно данному изобретению рекомбинантный Fc-слитый белок может продуцироваться в эука- 10017152 риотической системе экспрессии, такой как клетки дрожжей, насекомого или млекопитающего, приводящей к гликозилированным Fc-содержащим белкам. Согласно данному изобретению наиболее предпочтительно экспрессировать Fc-содержащий белок в клетках млекопитающих, таких как клеточные линии животных, или в клеточных линиях человека. Клетки яичника китайского хомячка (СНО) или клеточная линия миеломы мыши NS0 являются примерами клеточных линий, которые являются особенно подходящими для экспрессии Fc-содержащего белка, подлежащего очистке. Этот Fc-содержащий белок может также предпочтительно продуцироваться в клеточных линиях человека, таких как, например, клеточная линия фибросаркомы НТ 1080 человека, клеточная линия ретинобластомы человека PERC6 или клеточная линия эмбриональной почки человека 293 либо перманентная клеточная линия амниоцитов, как описано, например, в ЕР 1230354. Если Fc-слитый белок, подлежащий очистке, экспрессируется клетками млекопитающих, секретирующими его, исходным материалом способа очистки этого изобретения является супернатант культуры клеток, также называемый сбором клеток или неочищенным сбором. Если клетки культивируют в среде,содержащей сыворотку животного, супернатант этой культуры клеток также содержит сывороточные белки в качестве загрязнений. Предпочтительно экспрессирующие и секретирующие Fc-содержащий белок клетки культивируют в бессывороточных условиях. Fc-содержащий белок может также продуцироваться в среде с определенным химическим составом. В этом случае исходным материалом способа очистки является супернатант бессывороточной культуры клеток, который содержит в основном белки клеток-хозяев в качестве загрязнений. Если к среде культуры клеток добавляют факторы роста, такие как инсулин, эти белки будут также элиминироваться во время процесса очистки. Для создания растворимых, секретируемых Fc-содержащих белков, которые высвобождаются в супернатант культуры клеток, используют либо природный сигнальный пептид терапевтической части Fcсодержащего белка, либо предпочтительно гетерологичный сигнальный пептид, т.е. сигнальный пептид,произведенный из другого секретируемого белка, являющийся эффективным в этой конкретной системе экспрессии, такой как, например, сигнальный пептид бычьего или человеческого гормона роста либо сигнальный пептид иммуноглобулина. Как упоминалось выше, предпочтительным Fc-содержащим белком для очистки согласно данному изобретению является Fc-содержащий белок, имеющий терапевтическую часть молекулы, произведенную из TACI человека (SEQ ID NO: 2), и, в частности, из его внеклеточного домена (аминокислоты 1-165SEQ ID NO: 2). Предпочтительный фрагмент содержит аминокислоты 30-110 SEQ ID NO: 2. В дальнейшем описании терапевтические части, произведенные из внеклеточного домена TACI, будут называться"растворимым TACI" или "sTACI". Предпочтительная Fc-часть молекулы содержит SEQ ID NO: 3, приводящую к Fc-слитому белку SEQ ID NO: 4, в дальнейшем описании называемому "TACI-Fc". ТерминTACI-Fc, в данном контексте, включает в себя также мутеины TACI-Fc. Термин "мутеины", в данном контексте, относится к аналогам sTACI или TACI-Fc, в которых один или несколько из аминокислотных остатков sTACI или TACI-Fc заменены другими аминокислотными остатками или делетированы, или один или несколько аминокислотных остатков добавлены к первоначальной последовательности sTACI или TACI-Fc без существенного изменения активности полученных продуктов в сравнении с первоначальными sTACI или TACI-Fc. Эти мутеины получают известными способами синтеза и/или сайт-направленного мутагенеза либо любым другим способом, подходящим для этого. Мутеины в соответствии с данным изобретением включают в себя белки, кодируемые нуклеиновой кислотой, такой как ДНК или РНК, которая гибридизуется с комплементом ДНК или РНК, который кодирует sTACI или TACI-Fc в соответствии с любой из SEQ ID NO: 2 или 4 при строгих условиях. Одним примером ДНК-последовательности, кодирующей TACI-Fc, является SEQ ID NO: 7. Термин "строгие условия" относится к гибридизации и последующим условиям промывки, которые специалисты с обычной квалификацией в данной области обычно называют "строгими". См. Ausubel etal., Current Protocols in Molecular Biology, supra, Interscience, N. Y.,6.3 and 6.4 (1987, 1992). Без ограничения, примеры строгих условий включают в себя условия промывки, на 12-20 С ниже рассчитанной Tm исследуемого гибрида, например в 2SSC и 0,5% ДСН в течение 5 мин, 2SSC и 0,1% ДСН в течение 15 мин; 0,1SSC и 0,5% ДСН при 37 С в течение 30-60 мин и затем 0,1SSC и 0,5% ДСН при 68 С в течение 30-60 мин. Специалисты с обычной квалификацией в данной области понимают, что условия строгости зависят также от длины ДНК-последовательностей, олигонуклеотидных зондов (например, 1040 оснований) или смешанных олигонуклеотидных зондов. Если используются смешанные зонды, предпочтительно использовать хлорид тетраметиламмония (ТМАС) вместо SSC, см. Ausubel, supra. В другом варианте осуществления любой такой мутеин имеет по меньшей мере 50, по меньшей мере 60, по меньшей мере 70, по меньшей мере 75, по меньшей мере 80, по меньшей мере 85, по меньшей мере 90 или по меньшей мере 95% идентичность или гомологию с исходным белком. Идентичность отражает родство между двумя или более полипептидными последовательностями или двумя или более полинуклеотидными последовательностями, определяемое сравнением этих после- 11017152 довательностей. Обычно идентичностью называют точное соответствие нуклеотида нуклеотиду или аминокислоты аминокислоте двух полинуклеотидов или двух полипептидных последовательностей соответственно на протяжении длины сравниваемых последовательностей. Для последовательностей, где нет точного соответствия, может быть определена "%-ная идентичность". Обычно, эти две сравниваемые последовательности сопоставляют для получения максимальной корреляции между этими последовательностями. Это может включать в себя инсертирование "гэпов" в любую одну из последовательностей или в обе последовательности для увеличения степени сопоставления, %-ная идентичность может быть определена на протяжении всей длины каждой из сравниваемых последовательностей (так называемое глобальное сопоставление), которое особенно удобно для последовательностей одной и той же длины, или на протяжении коротких определенных длин (так называемое локальное сопоставление), которое особенно удобно для последовательностей неравной длины. Способы для сравнения идентичности и гомологии двух или нескольких последовательностей хорошо известны в данной области. Так, например, программы, доступные в пакете Wisconsin SequenceAnalysis Package, version 9.1 (Devereux J. et al., 1984), например программы BESTFIT и GAP, могут быть использованы для определения %-ной идентичности между двумя полинуклеотидами и %-ной гомологии между двумя полипептидными последовательностями. BESTFIT использует алгоритм "локальной гомологии" Smith and Waterman (1981 г.) и находит наилучший единственный район сходства между двумя последовательностями. Другие программы для определения идентичности и/или сходства между последовательностями также известны в данной области, например семейство программ BLAST (Altschul S.F.et al., 1990, Altschul S.F. et al., 1997, доступное через домашнюю страницу NCBI в www.ncbi.nlm.nih.gov),и FASTA (Pearson W.R., 1990). Любой такой мутеин предпочтительно имеет последовательность аминокислот, достаточно "дубликатную" относительно последовательности sTACI или TACI-Fc, чтобы иметь, по существу, одинаковую лигандсвязывающую активность с активностью белка SEQ ID NO: 2 или 4. Например, одной активностью TACI является его способность связывания с Blys или APRIL (Hymowitz et al., 2006). Можно считать, что, пока этот мутеин имеет существенную связывающую APRIL или Blys активность, он имеет, по существу, одинаковую активность в отношении TACI. Таким образом, квалифицированный в данной области специалист может легко определить, имеет ли любой конкретный мутеин, по существу, ту же самую активность, что и белок SEQ ID NO: 2 или 4, посредством рутинного экспериментирования. Предпочтительные изменения для мутеинов согласно этому изобретению являются изменениями,которые известны как "консервативные" замены. Консервативные аминокислотные замены sTACI илиTACI-Fc могут включать в себя синонимичные аминокислоты в группе, которые имеют достаточно сходные физико-химические свойства, чтобы замена между членами этой группы сохраняла биологическую функцию этой молекулы (Grantham, 1974). Ясно, что инсерции и делеции аминокислот могут быть также произведены в вышеописанных последовательностях без изменения их функции, в частности, если эти инсерции или делеции включают в себя только небольшое число аминокислот, например менее тридцати, менее двадцати или предпочтительно менее десяти, и не удаляют или не заменяют аминокислоты,которые являются решающими для функциональной конформации, например остатки цистеина. Белки и мутеины, продуцируемые такими делениями и/или инсерциями, входят в сферу действия данного изобретения. Предпочтительно этими консервативными группами аминокислот являются группы, определенные в табл. 2. Более предпочтительно группами синонимичных аминокислот являются группы, определенные в табл. 3 и наиболее предпочтительно группами синонимичных аминокислот являются группы, определенные в табл. 4. Таблица 2 Предпочтительные группы синонимичных аминокислот Таблица 3 Более предпочтительные группы синонимичных аминокислот Таблица 4 Наиболее предпочтительные группы синонимичных аминокислот Функциональное производное может быть получено из Fc-слитого белка, очищенного в соответствии с данным изобретением. "Функциональные производные", в данном контексте, включают в себя производные Fc-содержащего белка, подлежащие очистке в соответствии с данным изобретением, которые могут быть получены из функциональных групп, которые встречаются в виде боковых цепей на этих остатках, или N- или С-концевых групп, способами, известными в данной области, и включены в это- 13017152 изобретение, пока они остаются фармацевтически приемлемыми, т.е. они не разрушают активность этого белка, которая является, по существу, одинаковой с этой активностью немодифицированного Fcсодержащего белка, определенного выше, и не придают токсичные свойства содержащим его композициям. Функциональные производные Fc-содержащего белка могут быть, например, конъюгированы с полимерами для улучшения свойств этого белка, таких как стабильность, время полужизни, биодоступность, переносимость организмом человека или иммуногенность. Для достижения этой цели Fcсодержащий белок может быть связан, например, с полиэтиленгликолем (ПЭГ). ПЭГилирование может проводиться известными способами, описанными, например, в WO 92/13095. Функциональные производные могут также включать в себя, например, алифатические эфиры карбоксильных групп, амиды карбоксильных групп, образованные реакцией с аммиаком или с первичными или вторичными аминами, N-ацилпроизводные свободных аминогрупп аминокислотных остатков, образованные с ацильными частями молекул (например, алканоильной или карбоциклической ароильной группами) или О-ацилпроизводные свободных гидроксильных групп (например, гидроксильных групп серильных или треонильных остатков), образованные с ацильными частями молекул. В третьем аспекте это изобретение относится к белку, очищенному способом очистки в соответствии с данным изобретением. Далее такой белок называется также "очищенным Fc-содержащим белком". Такой очищенный Fc-содержащий белок является предпочтительно высокоочищенным Fcсодержащим белком. Высокоочищенный Fc-слитый белок определяют, например, по присутствию единственной полосы в окрашенном серебром, невосстановленном геле электрофореза в ДСН-ПААГ после нанесения белка в количестве 2 мкг на дорожку. Очищенный Fc-слитый белок может быть также определен по элюции в виде единственного пика в ВЖХ. Препарат Fc-содержащего белка, полученный из процесса очистки этого изобретения, может содержать менее 20% загрязнений, предпочтительно менее 10, 5, 3, 2 или 1% загрязнений, или он может быть очищен до гомогенности, т.е. быть не содержащим каких-либо детектируемых белковых загрязняющих примесей согласно определению, например, электрофорезом в ДСН-ПААГ с окрашиванием серебром или ВЖХ, как объяснено выше. Очищенные Fc-содержащие белки могут быть предназначены для терапевтического применения, в частности для введения пациентам-людям. Если очищенный Fc-содержащий белок вводят пациентам, его вводят предпочтительно системно и предпочтительно подкожно или внутримышечно либо местно, т.е. локально. Может быть удобным также ректальное или внутриоболочечное введение в зависимости от конкретного медицинского применения очищенного Fc-содержащего белка. Для этой цели в предпочтительном варианте осуществления данного изобретения очищенный Fcсодержащий белок может быть приготовлен в виде фармацевтической композиции, т.е. вместе с фармацевтически приемлемым носителем, эксципиентами или т.п. Определение "фармацевтически приемлемый" включает в себя любой носитель, который не препятствует эффективности биологической активности активного ингредиента и который не является токсичным в отношении хозяина, которому его вводят. Например, для парентерального введения этот активный белок (активные белки) могут быть приготовлены в унифицированной (стандартной) форме для инъекции в таких носителях, как солевой раствор,раствор декстрозы, сывороточный альбумин и раствор Рингера. Активные ингредиенты фармацевтической композиции согласно этому изобретению могут вводиться индивидууму различными способами. Способы введения включают в себя интрадермальный,трансдермальный (например, в препаратах медленного высвобождения), внутримышечный, внутрибрюшинный, внутривенный, подкожный, пероральный, внутричерепной, эпидуральный, местный, ректальный и интраназальный способы введения. Может быть использован любой другой терапевтически эффективный способ введения, например абсорбция через эпителиальные или эндотелиальные ткани или посредством генной терапии, где пациенту вводят (например, посредством вектора) ДНК-молекулу, кодирующую активный агент, что вызывает экспрессию и секрецию этого активного агента in vivo. Кроме того, белок (белки) этого изобретения могут вводиться вместе с другими компонентами биологически активных агентов, такими как фармацевтически приемлемые поверхностно-активные вещества, эксципиенты, носители, разбавители и наполнители. Для парентерального (например, внутривенного, подкожного, внутримышечного) введения, активный белок (активные белки) могут быть приготовлены в виде раствора, суспензии, эмульсии или лиофилизированного порошка в ассоциации с фармацевтически приемлемым парентеральным носителем (например, водой, солевым раствором, раствором декстрозы) и добавками, которые поддерживают изотоничность (например, маннит) или химическую стабильность (например, консерванты и буферы). Этот препарат стерилизуют обычно используемыми способами. Терапевтически эффективные количества активного белка (активных белков) будут зависеть от многих переменных, в том числе от типа Fc-содержащего белка, аффинности Fc-содержащего белка в отношении его лиганда, способа введения, клинического состояния пациента."Терапевтически эффективное количество" является таким количеством, что при введении этот Fcсодержащий белок приводит к ингибированию его лиганда терапевтической части этого Fc-слитого белка, как объяснялось выше, и в соответствии с табл. 5 выше. Доза, вводимая в виде единственной дозы или в виде множественных доз индивидууму, будет варьироваться в зависимости от различных факторов, включающих в себя фармацевтические свойства Fcслитого белка, способ введения, состояние и характеристики пациента (пол, возраст, массу тела, состояние здоровья, размер), степень симптомов, одновременные способы лечения, частоту введения доз и желаемый эффект. Корректирование установленных диапазонов доз и манипулирование ими находится вполне в рамках квалификации специалистов в данной области, так же, как и способы in vitro и in vivo определения ингибирования его лиганда терапевтической части Fc-слитого белка в индивидууме. Очищенный Fc-содержащий белок может быть использован в количестве 0,001-100, или 0,01-10,или 0,1-5, или 1-3, или 2 мг/кг массы тела. В следующих предпочтительных вариантах осуществления очищенный белок Fc-слитый белок вводят один раз в день или каждый второй день либо три раза в неделю или один раз в неделю. Суточные дозы обычно вводят в разделенных дозах или в виде формы задержанного высвобождения, эффективной для получения желаемых результатов. Второе или последующие введения могут выполняться в виде дозы, которая является той же самой, меньшей или большей, чем начальная или предыдущая доза, введенная этому индивидууму. Второе или последующее введение может выполняться во время или до проявления этого заболевания. Данное изобретение относится также к применению катионообменной хроматографии для уменьшения концентрации свободных Fc-частиц в композиции, содержащей Fc-содержащий белок. В предпочтительном варианте осуществления концентрация свободного Fc уменьшается до менее 20, или менее 15, или менее 10, или менее 5, или менее 2, или менее 1, или менее 0,8, или менее 0,5, или менее 0,2, или менее 0,1% общей концентрации белка указанной композиции. После полного описания этого изобретения квалифицированным в данной области специалистам будет понятно, что оно может выполняться в широком диапазоне эквивалентных параметров, концентраций и условий без отклонения от идеи и объема этого изобретения и без чрезмерного экспериментирования. Хотя это изобретение было описано в связи с его конкретными вариантами осуществления, будет понятно, что оно может быть подвергнуто дополнительным модификациям. Эта заявка предназначена для включения любых вариаций, применений или адаптации этого изобретения в соответствии, в общем,с принципами этого изобретения и с включением таких отклонений от данного описания, которые находятся в пределах известной или обычной практики в области, к которой относится это изобретение, и которые могут быть применены к основным признакам, описанным здесь выше, как следует из объема прилагаемой формулы изобретения. Все цитируемые здесь ссылки, в том числе журнальные статьи или аннотации, опубликованные или неопубликованные заявки на патент США или иностранные заявки, выданные США, или иностранные патенты или другие ссылки включены здесь в качестве ссылки в полном виде, в том числе со всеми результатами, таблицами, чертежом и текстом, представленными в этих цитируемых ссылках. Кроме того,все содержание этих ссылок в цитируемых здесь документах включено здесь в полном виде. Ссылка на известные стадии способа, общепринятые стадии способов, известные способы или общепринятые способы ни в коей мере не является признанием того, что любой аспект, любое описание или любой вариант осуществления этого изобретения описан, объяснен или высказан в качестве предположения в известном уровне техники. Предыдущее описание конкретных вариантов осуществления будет настолько полно выявлять основной характер этого изобретения, что другие исследователи могут посредством использования знаний,даваемых квалификацией в данной области (в том числе приведенным содержанием цитируемых ссылок), легко модифицируют и/или адаптируют для различного применения такие конкретные варианты осуществления, без чрезмерного экспериментирования, без отклонения от общей концепции данного изобретения. Таким образом, предполагается, что такие адаптации и модификации находятся в диапазоне эквивалентов этих описанных вариантов осуществления на основании утверждений и руководящих описаний, представленных в них. Должно быть понятно, что фразеология или терминология, применяемая здесь, служит цели описания, а не ограничения, так что эта терминология или фразеология данного описания должна интерпретироваться квалифицированным в данной области специалистом в свете объяснений и руководства, представленных здесь, в комбинации со знаниями специалиста с обычной квалификацией в данной области. Примеры Очистка рекомбинантного TACI-Fc человека из бессывороточного супернатанта клеток СНО Перечень сокращений:BV - объем слоя СНО - яичник китайского хомячкаDSP - процесс ниже по потокуELISA - твердофазный иммуносорбентный анализ НАС - гидроксиапатитная хроматография НСР - белок клетки-хозяина ВЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматографияPA-SE-HPLC - белок А - гель-проникающая высокоэффективная жидкостная хроматография м.д. - миллионные долиSE-HPLC - гель-проникающая высокоэффективная жидкостная хроматография ТС - температура ТМАС - хлорид тетраметиламмония УФ - ультрафиолетWRO - водный обратный осмос Пример 1. Стадия захвата. Аффинная очистка на белке А. Исходным материалом был осветленный сбор клона клеток СНО, экспрессирующих TACI-Fc, культивируемых при бессывороточных условиях и хранящихся в замороженном виде до использования. Стадию захвата на колонке MabSelect Xtra (GE Healthcare 17-5269-03) проводили в соответствии со следующим протоколом, на колонке, имеющей высоту слоя 17 см. Все операции выполняли при комнатной температуре, за исключением раствора для нанесения, который хранили при температуре ниже 15 С. Регистрировали сигнал УФ при 280 нм. Дезинфицирование. Колонку дезинфицировали по меньшей мере 3 колоночными объемами (3 BV) 0,1 М уксусная кислота + 20% этанол в обратном потоке при 250 см/ч. Этот поток останавливали и выдерживали в течение 1 ч. Стадия промывания. Колонку промывали по меньшей мере 2 колоночными объемами (2 BV) RO воды в обратном потоке при 250 см/ч. Уравновешивание. Колонку уравновешивали по меньшей мере 5 колоночными объемами (5 BV) 25 мМ фосфат натрия+ 150 мМ NaCl pH 7,0 (пока параметры проводимости и рН находятся в указанном диапазоне: рН 7,00,1, проводимость 182 мСм/см) в направленном вниз потоке при 450 см/ч. Нанесение. На колонку наносили осветленный сбор, хранящийся при температуре ниже 15 С, до емкости 15 мг общего TACI-Fc, определенной анализом Biacore, на 1 мл упакованной смолы при скорости потока 350 см/ч. Стадия промывания. Эту колонку промывали по меньшей мере 2 колоночными объемами (2 BV) буфера для уравновешивания при 350 см/ч, затем по меньшей мере 4 колоночными объемами (4 BV) буфера для уравновешивания (пока сигнал УФ не возвращался к линии фона) при 450 см/ч. Элюция. Этот материал элюировали различными буферами для элюции, как показано в табл. I, при скорости потока 350 см/ч. Фракцию элюата собирали от начала увеличения сигнала УФ до 6,00,5 BV элюции. Элюат инкубировали в течение 1 ч при комнатной температуре при рН ниже 4,1 (доведенном добавлением раствора лимонной кислоты, если необходимо) и затем рН доводили до 5,00,1 добавлением 32% раствора NaOH. Регенерация. Колонку регенерировали по меньшей мере 3 колоночными объемами (3 BV) 50 мМ NaOH + 1 МNaCl в обратном потоке при 450 см/ч, останавливали поток на 15 мин и затем снова запускали этот поток при 450 см/ч, по меньшей мере, в течение протекания 3 колоночных объемов (пока сигнал УФ не возвращался к линии фона). С этой стадии колонка работала в режиме обратного потока.- 16017152 Стадия промывания. Колонку промывали по меньшей мере 2 BV RO-воды при 450 см/ч. Дезинфицирование. Колонку дезинфицировали по меньшей мере 3 BV буфера для дезинфекции при 250 см/ч, поток останавливали и колонку инкубировали в течение 60 мин. Конечные стадии промывания. Колонку промывали по меньшей мере 1 BV RO-воды при 250 см/ч, затем по меньшей мере 3 BV буфера для уравновешивания при 250 см/ч и, наконец, по меньшей мере 2 BV RO-воды при 250 см/ч. Наконец, эту колонку хранили после промывания по меньшей мере 3 BV 20% этанола при 250 см/ч. Результаты. Таблица I Результаты с использованием различных буферов для элюцииTACI-Fc5 в осветленном сборе захватывали непосредственно на колонке MabSelect Xtra при динамической емкости 15 г общего TACI-Fc5 на 1 л упакованной смолы при скорости потока 350 см/ч. Условия элюции, в частности, рН, оптимизировали для максимизации извлечения продукта, при обеспечении значительного уменьшения уровней агрегатов. Был выбран буфер для элюции 0,1 М цитрат натрия рН 3,9, дающий приблизительно 5-10% уровни агрегатов, в сравнении с приблизительно 25-40% в осветлен- 17017152 ном сборе, без наблюдения мутности. Уровни НСР были обычно равны 1500-2000 м.д. Уровни НСР измеряли при помощи ELISA с использованием поликлональных антител. Эту смесь антител генерировали против белков клеток-хозяев, полученных из осветленного и концентрированного супернатанта культуры клеток нетрансфицированных клеток СНО. Пример 2. Катионообменная хроматография. Элюат из стадии захвата на белке А, диализованный в подходящий буфер для нанесения, использовали в качестве исходного материала для катионообменной хроматографии. В этой стадии использовали колонку Fractogel EMD SO3- (Merck 1.16882.0010), имеющую высоту слоя 10 см. Может быть использована также колонка Fractogel SO3- с высотой слоя 15 см. В последнем случае динамическая емкость и скорость потока могут требовать адаптации, которая находится вполне в пределах обычных знаний специалиста в данной области. Все операции выполняли при комнатной температуре и скорость потока поддерживали постоянной при 150 см/ч. При всех временных точках регистрировали сигнал УФ при 280 нм. Стадия промывания. Колонку промывали по меньшей мере 1 BV WRO (водным обратным осмосом). Дезинфицирование. Затем эту колонку дезинфицировали по меньшей мере 3 BV 0,5 М NaOH + 1,5 М NaCl в режиме потока вверх. Промывание. Эту колонку промывали по меньшей мере 4 BV WRO в режиме потока вниз. Уравновешивание. Колонку уравновешивали по меньшей мере 4 BV 100 мМ цитратом натрия рН 5,0 (или пока не достигались желаемая проводимость 121 мСм/см и рН 5,00,1). Нанесение. На колонку наносили материал после захвата при рН 5,0 (рН при 5,00,1, проводимость при 121 мСм/см) и при емкости не более 50 мг TACI-Fc, как определено анализом SE-HPLC, на 1 мл упакованной смолы. Стадия промывания. Затем колонку промывали по меньшей мере 5 BV 100 мМ фосфатом натрия рН 6,5. Элюция. Колонку элюировали различными буферами и при различных условиях, представленных в табл. IIIV ниже. Регенерация и дезинфицирование. Колонку регенерировали и дезинфицировали 4 BV 0,5 М NaOH + 1,5 М NaCl в режиме потока вверх. Затем поток останавливали и выдерживали в течение 30 мин. Промывание. Колонку промывали по меньшей мере 4 BV WRO. Хранение. Колонку хранили по меньшей мере в 3 BV 20% этанола. Результаты. Таблица II Действие рН и проводимости при элюции. Уровни НСР в нанесенном материале: 189 м.д. Табл. III показывает извлечение TACI-Fc и клиренс НСР при нанесении при емкости 10 и 32 мгTACI-Fc на 1 мл смолы и элюировании в фосфатном буфере при проводимости 12-33 мСм/см. Сбор пика- 18017152 выполняли от начала увеличения УФ в течение 100,5 BV. Таблица III Действие оптимального рН и проводимости при элюции при нанесении при емкости 10 и 32 мг TACI-Fc на 1 мл. Уровни НСР в нанесенном материале: 201 м.д. Табл. IV показывает действие стадии промывания 50 или 100 либо 150 мМ фосфатом натрия с рН 6,5 на извлечение TACI-Fc и клиренс НСР. Таблица IV Действие условий стадии промывания на производительность колонки. Уровни НСР в загрузке: 190 м.д. и уровни агрегатов: 2,0% Буфер, использованный в промывочном растворе 2, содержащий 100 мМ фосфат натрия рН 6,5,имел проводимость 8,4 мСм/см. Фиг. 1 показывает окрашенный серебром, невосстановленный гель электрофореза в ДСН-ПААГ проб, полученных из экспериментов с использованием условий трехстадийного промывания, показанных в табл. IV на клиренсе свободного Fc. Фиг. 2 показывает частично совпадающие хроматограммы экспериментов со стадиями очистки с фосфатом натрия при различных концентрациях. Стадию промывания оптимизировали при рН 6,5 с увеличивающимися концентрациями фосфата натрия (50-150 мМ). Как можно видеть на фиг. 1, концентрация промывочного буфера 150 мМ (промывка 3, дорожка 6) приводила к потерям TACI-Fc. Концентрация промывочного буфера 50 мМ (промывка 1, дорожка 8) приводила к пику чистого TACI-Fc, однако этот элюат содержал следы свободного Fc. Стадия промывки с 100 мМ фосфатом натрия рН 6,5 приводила к 98% извлечению в основном пике элюции и только 2% потерям в этой промывке (фиг. 2). Клиренс НСР увеличивался в 3,2 раза. Анализ фракций промывки и элюата при помощи электрофореза в ДСН-ПААГ показал, что стадия промывки содержала свободный Fc с некоторым количеством интактного TACI-Fc при концентрациях буфера 100 мМ или более высоких (фиг. 1, дорожки 4 и 6). Концентрация 100 мМ или более является необходимой для полного удаления свободного Fc из фракций элюата (фиг. 1, дорожки 5 и 7). Выводы. Катионообменную стадию вводили в качестве второй стадии очистки после стадии захвата. Элюат стадии захвата был при низком рН (5,0) и низкой проводимости и мог быть непосредственно нанесен на катионообменник. Была выбрана смола Fractogel EMD SO3- с загрузочной емкостью 50 мг/мл. Продукт не биологически активной деградации, свободный Fc, мог быть эффективно удален в стадии промывки 0,1 М фосфатом натрия рН 6,5. Условия элюции были оптимизированы для наилучшего клиренса НСР и высокого извлечения TACI-Fc (179 мМ фосфат натрия рН 8,0, проводимость 20,7 мСм/см). Альтернативно, элюция может проводиться в 10 BV 20 мМ фосфата натрия и 180 мМ NaCl, рН 8,0 от начала увеличения оптической плотности при 280 нм. Пример 3. Анионообменная хроматография. Исходным материалом, используемым для этой стадии очистки, был элюат из катионообменной стадии на Fractogel SO3- (см. пример 2), разведенный или диализованный в подходящий буфер для нанесения. Эту стадию анионообменной хроматографии проводили на колонке SOURCE 30Q (GE Healthcare 17-1275-01) с высотой слоя 10 см. В этой стадии может быть также использована колонка SOURCE 30Q с высотой слоя 15 см. В последнем случае, динамическая емкость и скорость потока могут требовать адаптации, которая находится вполне в пределах обычных знаний специалиста в данной области. Все операции выполняли при комнатной температуре и регистрировали сигнал УФ при 280 нм. Эти стадии проводили при скорости потока либо 150, либо 200 см/ч.- 19017152 Промывание. Сначала эту колонку промывали по меньшей мере 1 BV RO воды при скорости потока 150 см/ч. Дезинфицирование. Затем колонку дезинфицировали по меньшей мере 3 BV 0,5 М NaOH + 1,5 М NaCl. Стадия промывания. Колонку промывали по меньшей мере 3 BV, предпочтительно 4-10 BV 0,5 М фосфата Na pH 7,5 при скорости потока 200 см/ч. Уравновешивание. Колонку уравновешивали по меньшей мере 5 BV 10, 15, 20, 25 или 30 мМ фосфата натрия рН 7,5. Необязательно, эта колонка может быть предварительно уравновешена 3 BV 0,5 М фосфата натрия рН 7,5. Нанесение, промывание и сбор загрязнителей TACI-Fc в проходящем потоке. На колонку наносили материал, полученный после катионообмена, разведенный для получения концентрации фосфата 10-30 мМ, рН 7,5 при емкости не более 50 мг TACI-Fc, согласно определению при помощи анализа SE-HPLC, на 1 мл упакованной смолы, собирая проходящий поток от начала увеличения УФ до конца этой стадии промывания, которую проводят в 40,5 BV буфера для уравновешивания. Регенерация/дезинфицирование. Эту колонку регенерировали и дезинфицировали по меньшей мере 3 BV 0,5 M NaOH + 1,5 M NaCl в режиме обратного потока (пока сигнал УФ не возвращается к линии фона) при скорости потока 150 см/ч. В конце этой регенерации насос останавливали на 30 мин. Стадия промывания. Эту колонку промывали по меньшей мере 3 BV RO воды при скорости потока 200 см/ч. Хранение. Эту колонку хранили по меньшей мере в 3 BV 20% этанола (об./об.). Результаты. Следующая табл. V суммирует результаты, полученные с использованием способа очистки, описанного выше. Таблица V Действие концентрации используемого для нанесения (загрузки) фосфата Выводы. Анионообменную стадию на колонке Source 30Q в проточном режиме оптимизировали для максимизации клиренса НСР и агрегатов. Нанесение элюата из катионообменника либо разведенного, либо диафильтрованного, в 20 мМ натрий-фосфатном буфере при рН 7,5 давало наилучший компромисс между извлечением продукта (90%) и клиренсом НСР (приблизительно от 2000 до 44 м.д.) и агрегатов (приблизительно от 25 до 5,6%). Использовали динамическую емкость 50 мг TACI-Fc на 1 мл упакованной смолы при скорости потока 150-200 см/ч. Пример 4. Гидроксиапатитная хроматография. Исходным материалом, используемым для этой стадии очистки, был проходящий поток анионообменной хроматографии (см. пример 3). Использовали СНТ Ceramic Hydroxyapatite Type I (CHT керамический гидроксиапатит типа I), колонку 40 мкм (Biorad 157-0040) с высотой слоя 10 см. Все операции проводили при комнатной температуре. Скорость потока поддерживали постоянной при 175 см/ч и регистрировали сигнал УФ при 280 нм. Все растворы стерильно фильтровали и оборудование дезинфицировали гидроксидом натрия перед использованием. Колонку хранили в 0,5 М раствореNaOH, когда ее не использовали. Начальные стадии промывки (промывание и предварительное уравновешивание). Эту колонку промывали по меньшей мере 1 BV 20 мМ буфера фосфата натрия рН 7,5 и затем по меньшей мере 3 BV 0,5 мМ буфера фосфата натрия рН 7,5 для снижения рН. Уравновешивание. Колонку уравновешивали по меньшей мере 5 BV 20 мМ фосфата натрия рН 7,5 (или пока не достигались желаемая проводимость 3,00,3 мСм/см и рН 7,50,1).- 20017152 Нанесение. На колонку наносили проходящий поток из колонки SOURCE 30Q с добавленным хлоридом кальция до конечной концентрации 0,1 мМ из исходного раствора при 0,5 М и рН доводили до 7,0 добавлением 85% ортофосфорной кислоты при емкости NMT 50 мг TACI-Fc, определенной при помощи анализаSE-HPLC, на 1 мл упакованной смолы. Можно также наносить проходящий поток из колонки SOURCE 30Q без хлорида кальция с доведением до рН 7,0 на гидроксиапатитной колонке. Стадии промывания. Эту колонку промывали по меньшей мере 4 BV 3, 4 или 5 мМ фосфатом натрия, 10 мМ MES, 0,1 мМ CaCl2 рН 6,5. В этих стадиях можно также использовать тот же самый буфер без хлорида кальция. Элюция. Колонку элюировали 5, 4, 3 или 2 мМ натрий-фосфатным буфером (см. табл. VI), 10 мМ MES, 0,1 мМ CaCl2 и 0,6, 0,7, 0,8 или 0,9 М KCl рН 6,5 (см. табл. VII) от начала увеличения УФ для различных BV(см. табл. VI и VII). Для элюции можно также использовать тот же самый буфер без хлорида кальция. Промывание. Колонку промывали по меньшей мере 1 BV 20 мМ натрий-фосфатного буфера рН 7,5; по меньшей мере 3 BV 0,5 М натрий-фосфатного буфера рН 7,5 и по меньшей мере 1 BV 20 мМ натрий-фосфатного буфера рН 7,5. Хранение. Эту колонку хранили по меньшей мере в 3 BV 0,5 М NaOH. Результаты. Табл. VI показывает действие концентрации фосфата (от 2 до 5 мМ) в буфере для элюции на клиренс агрегатов и извлечение продукта. Фракции пика элюции объединяли и анализировали при помощиSE-HPLC на концентрацию TACI-Fc и уровни агрегатов. Таблица VI Действие концентрации фосфата в буфере для элюции Табл. VII показывает действие концентрации KCl в буфере для элюции на клиренс агрегатов и извлечение продукта. Исследовали две концентрации фосфата натрия: 2 и 3 мМ. Фракции пика элюции объединяли и анализировали при помощи SE-HPLC на концентрацию TACI-Fc и уровни агрегатов.- 21017152 Таблица VII Действие концентрации хлорида калия в буфере для элюции Выводы. Гидроксиапатитная хроматография обеспечивает надежный эффективный способ уменьшения уровней агрегатов TACI-Fc. С использованием в качестве исходного материала очищенного анионообменной хроматографией материала (см. пример 3) с уровнями агрегатов приблизительно 5-8% гидроксиапатитная хроматография может уменьшать эти уровни до менее 0,8% с извлечением TACI-Fc 8590%. Ссылки. 1. Akerstrom and Bjork, J. Biol. Chem. 1989, Nov. 25; 264(33): 19740-6. 2. Altschul S.F. et al., J. Mol. Biol., 215, 403-410, 1990. 3. Altschul S.F. et al., Nucleic Acids Res., 25:389-3402, 1997. 4. Armour K.L. et al., 1999, Recombinant human IgG molecules lacking Fcgamma receptor I binding and